اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات282
تعداد نشریات سازمان80
تعداد شماره‌ها3,191
تعداد مقالات35,352
تعداد مشاهده مقاله51,718,299
تعداد دریافت فایل اصل مقاله91,423,841
میرجانی, لیلا, قمری زارع, عباس, اسپهبدی, کامبیز. (1401). حفظ ذخایر ژنتیکی گونه زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.) در فراسرد. سامانه مدیریت نشریات علمی, 30(1), 108-117. doi: 10.22092/ijrfpbgr.2022.357696.1409
لیلا میرجانی; عباس قمری زارع; کامبیز اسپهبدی. "حفظ ذخایر ژنتیکی گونه زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.) در فراسرد". سامانه مدیریت نشریات علمی, 30, 1, 1401, 108-117. doi: 10.22092/ijrfpbgr.2022.357696.1409
میرجانی, لیلا, قمری زارع, عباس, اسپهبدی, کامبیز. (1401). 'حفظ ذخایر ژنتیکی گونه زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.) در فراسرد', سامانه مدیریت نشریات علمی, 30(1), pp. 108-117. doi: 10.22092/ijrfpbgr.2022.357696.1409
میرجانی, لیلا, قمری زارع, عباس, اسپهبدی, کامبیز. حفظ ذخایر ژنتیکی گونه زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.) در فراسرد. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1401; 30(1): 108-117. doi: 10.22092/ijrfpbgr.2022.357696.1409

حفظ ذخایر ژنتیکی گونه زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.) در فراسرد

تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران
دوره 30، شماره 1 - شماره پیاپی 59، شهریور 1401، صفحه 108-117    اصل مقاله (979.26 K)
نوع مقاله: مقاله علمی - پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijrfpbgr.2022.357696.1409
نویسندگان
لیلا میرجانی* 1؛ عباس قمری زارع2؛ کامبیز اسپهبدی3
1پژوهشگر، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
2دانشیار، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
3دانشیار، بخش تحقیقات جنگل‌ها و مراتع، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان مازندران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
چکیده
      گونه درخت جنگلی زبان‌گنجشک (ون) (Fraxinus excelsior L.)، در IUCN، جزو گروه گیاهان در معرض تهدید، به علت گسترش بیماری مرگ ون می‌باشد. به‌همین دلیل، حفظ ذخیره ژنتیکی این گونه اهمیت زیادی دارد. ذخیره‌سازی بذر و اندام گیاهی در شرایط فراسرد، روشی بسیار کارآمد در نگهداری بلندمدت ژرم‌پلاسم گونه‌های گیاهیست. بذرهای ون از منطقه سنگده استان مازندران جمع‌آوری شدند. از تیمارهای مختلف آب‌گیری برای نگهداری بذرهای ون در فراسرد استفاده شد. به همین منظور از ‌تیمارهای گلیسرول 30 درصد، محلول شیشه‌ای شدن و کاهش رطوبت بذر پیش از ورود به نیتروژن مایع استفاده شد. بذرهای تیمارشده پس از 24 ساعت از نیتروژن مایع خارج و ذوب شدند. سپس به‌همراه بذرهای شاهد از نظر زنده‌مانی و خصوصیات جوانه‌زنی بررسی گردیدند. بیشترین درصد قوه نامیه (92%) و درصد جوانه‌زنی بذرها (36%) مربوط به تیمار کاهش رطوبت بود. میزان رطوبت بذر ون در زمان رسیدگی 5 درصد وزنی بود. در تیمار کاهش رطوبت‌ که بذرها در دسیکاتور حاوی سیلیکاژل تحت شرایط خلأ قرار گرفتند، رطوبت بذرها 66/1 درصد نسبت به زمان رسیدگی کاهش یافت. کاهش رطوبت بذر از کریستاله شدن و پارگی غشاءها در نیتروژن مایع جلوگیری می‌کند. ‌تیمارهای گلیسرول 30% و شیشه‌ای شدن نیز موفقیت‌آمیز بود، اما احتمالا به جنین بذر آسیب زده و موجب کاهش ‌درصد زنده‌مانی بذرها می‌شود. به‌این‌ترتیب بذرهای ون جمع‌آوری شده، با استفاده از فناوری فراسرد و به‌کارگیری ‌تیمار کاهش رطوبت، به‌دلیل بازدهی بالاتر و عدم نیاز به استفاده از مواد شیمیایی، در بانک فراسرد مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور ذخیره شدند تا برای مدت طولانی حفظ شوند و از انقراض این گونه ارزشمند و منحصربه‌فرد جلوگیری شود.
کلیدواژه‌ها
آبگیری؛ احیا؛ حفاظت‌کننده‌ فراسرد؛ ذخیره ژنوم
عنوان مقاله [English]
Preservation of the genetic resources of Fraxinus excelsior L. in cryopreservation
نویسندگان [English]
L. mirjani1؛ A. Ghamarizare2؛ K. Spahbodi3
1Ph.D., Research Institute of Forests and Rangelands, Agricultural Research Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, I.R. Iran.
2Associate Prof., Research Institute of Forests and Rangelands, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, I.R.Iran
3Assoc. Prof., Forests and Rangelands Research Department, Mazandaran Agricultural and Natural Resources Research and Education Center, AREEO, Sari, I.R. Iran
چکیده [English]
According to the IUCN, Fraxinus excelsior L. is a near-threatened species due to the spread of Ash dieback disease. Thus, it is important to preserve the genetic resourse of this species. Seeds and plant organs storage under cryopreservation conditions  is a very efficient method to maintain the germplasm of plant species for a long time. Ash seeds were collected from Sangdeh region of Mazandaran province, Iran. Three dehydration treatments were applied to store ash seeds in the cryopreservation. The treatments were 30% glycerol pretreatments, vitrification, and desiccation which were used before entering to liquid nitrogen. After 24 hours, the treated seeds were removed from liquid nitrogen and thawed. Then, they were evaluated for viability and seed germination traits in coimparison to the control. The highest seed viability (92%) and germination (36%) were related to desiccation treatment. The moisture content of F. excelsior seeds at maturity was 5%(w/w). For desiccation treatment, the seeds were placed in a desiccator containing silica gel under vacuum conditions. The moisture content of the seeds decreased by 1.66% compared to the ripening time. Reducing the amount of seed moisture prevents crystallization and rupture of plasma membranes in liquid nitrogen. Glycerol 30% and vitrification treatments were also successful, but probably damaged the seed embryo and reduced the seed survival rate. Due to higher efficiency and no need to use chemicals, the collected ash seeds successfully cryopreserved in the Cryo-Bank of the Research Institute of Forests and Rangelands, Iran, to preserve for a long term and to prevent the extinction of this valuable and unique species.
کلیدواژه‌ها [English]
Cryoprotectant, desiccation, genome storage, resuscitation
مراجع
  • Chmielarz, P. L., 2009. Cryopreservation of dormant European ash (Fraxinus excelsior) orthodox seeds, Tree Physiology 29, 1279–1285.https://doi.org/10.1093/treephys/tpp064
  • Ellis, R.A., and Roberts, E.H., 1981. The quantification of ageing and survival in orthodox seeds. Seed Science Technology, 9: 373-409.
  • Gale, S., John A., Harding, K. and Benson, E., 2008. Developing cryopreservation for Picea stichensis (sitca spruce) somatic embryos: a comparison of vitrification protocols. CryoLetters 29(2):135-144.
  • Hatami, F., Jebelli, M., Naderishahab, M., Tabari, M. and Jafari, A.A., 2013. Cryopreservation of Acer monspessulanum Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 18 (1): 12-23. (In Persian).
  • 2007. International Rules for Seed Testing. Seed Science Technology, 13: 299-520.
  • Jebelli, M., Naderishahab, M.A. and Jafari, A.A., 2013. Cryopreservation of seeds of Acacia tortilis and Acacia nilotica. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 23 (1): 103-111. (In Persian).
  • Khela, S. & Oldfield, S., 2018. Fraxinus excelsior. The IUCN Red List of Threatened Species http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.20181.RLTS.T203367A67807718.en
  • Lambardi, M., Fabbri, A. and Caccavale, A., 2000. Cryopreservation of white poplar (Populus alba) by vitrification of in vitro-grown shoot tips. Plant Cell Reports, 19(3): 213-218.
  • Linington SH, Pritchard HW. 2001. Gene banks. In: Encyclopedia of biodiversity (Levin SA, ed). 3rd Academic Press, New York, USA, pp 165-181.
  • Lombardo, G., Scialabba, A., & Schicchi, R., 2013. Seed cryopreservation of Fraxinus angustifolia Vahl, African Journal of Biotechnology, 12(16), 1930–1936. https://doi.org/10.5897/AJB12.2866
  • Mirjani, L., Ghamarizare, A., and Espahbodi, K. 2021. Preservation of the genome of Cerasus avium (L.) Moench. in cryopreservation conditions. Iranian Journal of Forest and Poplar Research. 28 (4). 370-381. (In Persian).
  • Mozaffarian, V. 2005. Trees and Shrubs of Iran. Farhang Moaser, Tehran, Iran, 1082p (In Persian).
  • Murashige, T. and Skooge, F., 1962. A revised Medium for rapid growth and bio- assays with tobacco Tissue Culture. Physiologia Plantarum, 15: 473-597.
  • Naderishahab, M.A. Jebelli, M., and Jafari, A.A., 2015. Assessment of maintenance of Ziziphus spina-christi (L.) Desf. Seed under cryogenic conditions. Iranian Journal of Seed Science and Research, 3 (1): 111-120.
  • Naderishahab, M.A. Jebelli, M., and Jafari, A.A., 2017.Cryopreservation of Ulmus glabra Hudson seeds. Journal of Forest and Wood Products. 69(4):681-691. (In Persian)
  • Ozudogru, A., Capuana, M., Kaya, E., Panis, B. and Lambardi, M., 2010. Cryopreservation of Fraxinus Excelsior L. Embryogenic Callus by One-Step Freezing and Slow Cooling Techniques. CryoLetters 31 (1), 63-75
  • Panis B, Lambardi M., 2005. Status of Cryopreservation Technologies in Plant (Crops and Forest Trees). Proc. Int. Workshop “The Role of Biotechnology for the Characterization and conservation of Crop, Forestry, Animal, and Fishery Genetic Resources, Turin, pp 43-54.
  • Ranai, M.A., and De Santana, D.G., 2006. How and why it measure the germination process. Revista Brasileira de Botanica, 29: 1-11. https://doi.org/10.1590/S0100-84042006000100002
  • Turner, S., Seranatna, T., Touchell, D., Bunn, E., Dixon, K. and Tan, B., 2001. Stereochemical arrangement of hydroxyl groups in sugar and polyalcohol molecules as an important factor in effective cryopreservation. Plant Science, 160(3): 489-497.
  • Walters, C., Touchell, H.D., Power, P., Wesley-Smith, J. and Antolin, M.F. 2002. A cryopreservation protocol for embryos of the endangered species Zizania texana. Cryo Letters, 23(5): 291-298.
  • Wen, B. and Song, S., 2007. Acquisition and loss of cryotolerance in Livistona chinensis embryos during seed development. Cryo Letters, 28(4): 291-302.

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 543
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 393


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب