Kamrani, N, Karimi, A, Nazari, M, Masoudi, R. (1400). Modulation of Negative Effects of Physiological Stress on Frozen-Thawed Semen with Nutrition of Organic Selenium in Ross 308 Rooster. سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(6), 1787-1795. doi: 10.22092/ari.2021.355960.1765
N Kamrani; A Karimi; M Nazari; R Masoudi. "Modulation of Negative Effects of Physiological Stress on Frozen-Thawed Semen with Nutrition of Organic Selenium in Ross 308 Rooster". سامانه مدیریت نشریات علمی, 76, 6, 1400, 1787-1795. doi: 10.22092/ari.2021.355960.1765
Kamrani, N, Karimi, A, Nazari, M, Masoudi, R. (1400). 'Modulation of Negative Effects of Physiological Stress on Frozen-Thawed Semen with Nutrition of Organic Selenium in Ross 308 Rooster', سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(6), pp. 1787-1795. doi: 10.22092/ari.2021.355960.1765
Kamrani, N, Karimi, A, Nazari, M, Masoudi, R. Modulation of Negative Effects of Physiological Stress on Frozen-Thawed Semen with Nutrition of Organic Selenium in Ross 308 Rooster. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1400; 76(6): 1787-1795. doi: 10.22092/ari.2021.355960.1765
Modulation of Negative Effects of Physiological Stress on Frozen-Thawed Semen with Nutrition of Organic Selenium in Ross 308 Rooster
1Department of Animal Science, Faculty of Ahar Agriculture & Natural Resources, University of Tabriz, Tabriz, Iran
2Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
3Animal Science Research Institute of Iran (ASRI), Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
چکیده
Current experiment was carried out in factorial 2×2 arrangement to study the effects of stress (with or without dexamethasone administration) and addition of dietary selenium (with or without selenium supplementation in the diet) in male broiler breeder on the quality of frozen-thawed sperm under oxidative stress induced by dexamethasone. A total of 24 broiler breeder roosters with the age of 28 weeks were used based on a completely randomized design with four therapeutic approaches (factorial 2×2) and six birds in each approach. The experimental treatments were: 1) basal diet without selenium supplementation and injection of saline (CON), 2) basal diet with dexamethasone injection (4 mg/kg BW, three times every other day for one week), (DEX), 3) without dexamethasone injection and supplementation with 0.3 mg/kg selenium (Sel-Plex), and 4) dexamethasone injection and basal diet supplemented with 0.3 mg/kg of diet selenium (Sel-Plex+Dex). Sperm samples were collected from roosters. Motility, progressive motility, plasma membrane integrity, viability, malondialdehyde concentration and antioxidant parameters were evaluated in fresh and frozen-thawed semen. In spite of non-significant interaction effects, factorial analysis indicated the significant effect of every factor on different experimental parameters in fresh and frozen-thawed semen (P<0.05); The results revealed that total and progressive motility, plasma membrane integrity and viability were lower in DEX group when compared with other treatments (P<0.05). On the other hand, malondialdehyde concentration was higher in DEX group in comparison with Con, Sel-Plex and Sel-Plex+DEX groups (P<0.05). Moreover, total antioxidant capacity, level of glutathione peroxidase and superoxide dismutase were lower in DEX group as compared with other treatments (P<0.05). Our findings indicated that administration of selenium in dexamethasone-receiving roosters (Sel-Plex+DEX) improved the parameters of fresh and frozen-thawed sperm; but the best results were observed in Sel-Plex treatment. Therefore, selenium supplementation in the diet of roosters without dexamethasone injection improved total motility, progressive motility, membrane integrity, viability, malondialdehyde, total antioxidant capacity, glutathione peroxidase and superoxide dismutase pre- and post-freezing. It can be concluded, selenium in organic forms in stressed and non-stressed rooster's diet might improve all motility and antioxidant parameters in fresh and frozen-thawed sperm.
بهبود اثرات منفی استرس فیزیولوژیکی بر منی منجمد-یخگشایی، با تغذیه سلنیوم آلی در خروس راس 308
چکیده [English]
مطالعه حاضر در قالب طرح فاکتوریل 2×2 بمنظور بررسی تاثیر استرس (با تجویز و یا بدون تجویز دگزامتازون) و تغذیه سلنیوم (با و بدون مکملسازی جیرهای) بر کیفیت اسپرم منجمد-یخگشایی شده در پرندگان نر مادر گوشتی انجام شد. تعداد 24 قطعه خروس مادر گوشتی با سن 28 هفته بطور تصادفی به 4 تیمار (فاکتوریل 2×2) و6پرنده در هر تیمار تقسیم شدند. تیمارهای آزمایشی عبارت بودند از 1) جیره پایهای بدون مکملسازی سلنیوم و تزریق محلول سرم فیزیولوژیکی (CON)، 2) جیره پایه با تزریق دگزامتازون( 4 میلیگرم به ازای کیلوگرم وزن بدن، یک روز در میان برای مدت یک هفته)(DEX)، 3) بدون تزریق دگزامتازون و جیره پایه مکمل شده با 3/0 میلیگرم سلنیوم آلی از منبع سلپلکس در کیلوگرم خوراک (Sel-Plex) و 4) تجویز دگزامتازون و جیره پایه مکمل شده با 3/0 میلیگرم سلنیوم آلی از منبع سلپلکس در کیلوگرم خوراک (Sel-Plex+Dex). نمونههای اسپرم از پرندگان جمعآوری شد. تحرک کل و پیشرونده، پیوستگی غشای پلاسمایی، زندهمانی، غلظت مالون دیآلدهید و فرآسنجههای آنتیاکسیدانی در اسپرم تازه و منجمد-یخگشایی شده ارزیابی شدند. علیرغم تاثیرات متقابل غیرمعنیدار، آنالیز فاکتوریل اثرات ساده معنیداری را از فاکتورهای آزمایشی در بررسی فرآسنجههای مختلف آزمایشی در اسپرم تازه و منجمد شده نشان داد(05/0>p). نتایج نشان داد که تحرک کل و پیشرونده، پیوستگی غشای پلاسمایی و زندهمانی در گروه دگزامتازون پایینتر از سایرین بود(05/0>p). از طرف دیگر غلظت مالون دیآلدهید در گروه مذکور نسبت به گروههای دیگر بالاتر بوده (05/0>p) و علاوه بر اینکه ظرفیت کل آنتیاکسیدانی، غلظت گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز در گروه دگزامتازون پایینتر از سایر تیمارها بود(05/0>p). نتایج نشان داد که مصرف سلنیوم در گروه دریافت کننده دگزامتازون فراسنجههای مختلف را در اسپرم تازه و منجمد-یخگشایی شده بهبود داد؛ اما بهترین نتایج در گروه Sel-Plex مشاهده شد(05/0>p). بنابراین تجویز سلنیوم در جیره خروسهای بدون تزریق دگزامتازون تحرک کل و پیشرونده، پیوستگی غشای پلاسمایی، زندهمانی، غلظت مالون دیآلدهید، گلوتاتیون پراکسیداز، سوپراکسید دیسموتاز و ظرفیت آنتیاکسیدانی کل را در اسپرم پس از انجماد بهبود داد. بطور کلی نتیجهگیری میشود که استفاده شکل آلی سلنیوم در خوراک خروسهای تحت استرس فیزیولوژیک ویا بدون استرس فرآسنجههای حرکتی و آنتیاکسیدانی را در اسپرمهای تازه و منجمد-یخگشایی شده بهبود میدهد.
Jamali N, Kaka A, Khatri P, Malhi M, Naeem M, Memon AA, et al. Effect of in vitro Selenium Addition to the Semen Extender on the Spermatozoa Characteristics before and after Freezing in Kundhi Buffalo Bull and in vivo Fertility Rate. Pak J Zool. 2019;51.
Kemal Duru N, Morshedi M, Oehninger S. Effects of hydrogen peroxide on DNA and plasma membrane integrity of human spermatozoa. Fertil Steril. 2000;74(6):1200-7.
Pascual A, Aranda A. Thyroid hormone receptors, cell growth and differentiation. Biochim Biophys Acta. 2013;1830(7):3908-16.
Arthur JR. The glutathione peroxidases. Cell Mol Life Sci. 2000;57(13-14):1825-35.
Flohe L. The selenoprotein glutathione peroxidase. Glutathione : chemical, biochemical and medical aspects. 1989:644-731.
Ebeid TA. Organic selenium enhances the antioxidative status and quality of cockerel semen under high ambient temperature. Br Poult Sci. 2009;50(5):641-7.
El-Habbak M, Abou-EL-Soud S, Ebeid T. Effect of induced stress by dexamethasone administration on performance, egg quality and some blood parameters of laying hens. Egypt Poult Sci. 2005;25:89-105.
Emir J, Agric, Eid Y, Ebeid T. Reduction of dexamethasone-induced oxidative stress and lipid peroxidation in laying hens by dietary vitamin E supplementation. Emirates J Food Agric. 2008;28:40.
Min YN, Niu ZY, Sun TT, Wang ZP, Jiao PX, Zi BB, et al. Vitamin E and vitamin C supplementation improves antioxidant status and immune function in oxidative-stressed breeder roosters by up-regulating expression of GSH-Px gene. Poult Sci. 2018;97(4):1238-44.
Amini MR, Kohram H, Zare Shahaneh A, Zhandi M, Sharideh H, Nabi MM. The effects of different levels of vitamin E and vitamin C in modified Beltsville extender on rooster post-thawed sperm quality. Cell Tissue Bank. 2015;16(4):587-92.
Nabi MM, Kohram H, Zhandi M, Mehrabani-Yeganeh H, Sharideh H, Zare-Shahaneh A, et al. Comparative evaluation of Nabi and Beltsville extenders for cryopreservation of rooster semen. Cryobiology. 2016;72(1):47-52.
Najafi A, Kia HD, Mehdipour M, Hamishehkar H, Alvarez-Rodriguez M. Effect of quercetin loaded liposomes or nanostructured lipid carrier (NLC) on post-thawed sperm quality and fertility of rooster sperm. Theriogenology. 2020;152:122-8.
Feyzi S, Sharafi M, Rahimi S. Stress preconditioning of rooster semen before cryopreservation improves fertility potential of thawed sperm. Poult Sci. 2018;97(7):2582-90.
Macfarlane JS. Salamon's artificial insemination of sheep and goats. Trop Anim Health Prod. 1991;23(2):114-.
Roca J, Rodríguez MJ, Gil MA, Carvajal G, Garcia EM, Cuello C, et al. Survival and in vitro fertility of boar spermatozoa frozen in the presence of superoxide dismutase and/or catalase. J Androl. 2005;26(1):15-24.
Marin-Guzman J, Mahan DC, Whitmoyer R. Effect of dietary selenium and vitamin E on the ultrastructure and ATP concentration of boar spermatozoa, and the efficacy of added sodium selenite in extended semen on sperm motility. J Anim Sci. 2000;78(6):1544-50.
Eid Y, Ebeid T, Younis H. Vitamin E supplementation reduces dexamethasone-induced oxidative stress in chicken semen. Br Poult Sci. 2006;47(3):350-6.
FW E. Practical applications for selenomethionine: broiler breeder reproduction. Proceeding of the 18th annual symposium: nutritional biotechnology in the feed and food industry Nottingham University Press. 29: Nottingham; 2002. p. 42.
Slowinska M, Jankowski J, Dietrich GJ, Karol H, Liszewska E, Glogowski J, et al. Effect of organic and inorganic forms of selenium in diets on turkey semen quality. Poult Sci. 2011;90(1):181-90.
Aengwanich W. Effects of dexamethasone on physiological changes and productive performance in broilers. Asian J Anim Vet Adv. 2007;32(2):157-61.
Dimitrov SG, Atanasov VK, Surai PF, Denev SA. Effect of organic selenium on turkey semen quality during liquid storage. Anim Reprod Sci. 2007;100(3-4):311-7.
Petrujkić BT, Šefer DS, Jovanović IB, Jovičin M, Janković S, Jakovljević G, et al. Effects of commercial selenium products on glutathione peroxidase activity and semen quality in stud boars. Anim Feed Sci Technol. 2014;197:194-205.
Froman DP, Thurston RJ. Chicken and turkey spermatozoal superoxide dismutase: a comparative study. Biol Reprod. 1981;24(1):193-200.
Cunningham ML, Ringrose PS, Lokesh BR. Inhibition of the genotoxicity of bleomycin by superoxide dismutase. Mutat Res Toxicol. 1984;135(3):199-202.
Avunduk AM, Yardımcı S, Avunduk MC, Kurnaz L, Cengiz M. A Possible Mechanism of X-Ray–Induced Injury in Rat Lens. Jpn J Ophthalmol. 2000;44(1):88-91.