اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,929
تعداد مقالات33,057
تعداد مشاهده مقاله43,658,174
تعداد دریافت فایل اصل مقاله20,149,610
البرزی, علیرضا, حسینی, ماندانا, بهرامی, سمیه, قربانپورنجف آبادی, مسعود, تابنده, محمدرضا. (1401). ارزیابی فعالیت کمپلمان و لیزوزیم و تعیین تیتر آنتی‌بادی در سرم میزبان‌های واسط آلوده به لینگواتولا سراتا با هماگلوتیناسیون غیر‌مستقیم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 35(2), 49-56. doi: 10.22092/vj.2021.354863.1862
علیرضا البرزی; ماندانا حسینی; سمیه بهرامی; مسعود قربانپورنجف آبادی; محمدرضا تابنده. "ارزیابی فعالیت کمپلمان و لیزوزیم و تعیین تیتر آنتی‌بادی در سرم میزبان‌های واسط آلوده به لینگواتولا سراتا با هماگلوتیناسیون غیر‌مستقیم". سامانه مدیریت نشریات علمی, 35, 2, 1401, 49-56. doi: 10.22092/vj.2021.354863.1862
البرزی, علیرضا, حسینی, ماندانا, بهرامی, سمیه, قربانپورنجف آبادی, مسعود, تابنده, محمدرضا. (1401). 'ارزیابی فعالیت کمپلمان و لیزوزیم و تعیین تیتر آنتی‌بادی در سرم میزبان‌های واسط آلوده به لینگواتولا سراتا با هماگلوتیناسیون غیر‌مستقیم', سامانه مدیریت نشریات علمی, 35(2), pp. 49-56. doi: 10.22092/vj.2021.354863.1862
البرزی, علیرضا, حسینی, ماندانا, بهرامی, سمیه, قربانپورنجف آبادی, مسعود, تابنده, محمدرضا. ارزیابی فعالیت کمپلمان و لیزوزیم و تعیین تیتر آنتی‌بادی در سرم میزبان‌های واسط آلوده به لینگواتولا سراتا با هماگلوتیناسیون غیر‌مستقیم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1401; 35(2): 49-56. doi: 10.22092/vj.2021.354863.1862

ارزیابی فعالیت کمپلمان و لیزوزیم و تعیین تیتر آنتی‌بادی در سرم میزبان‌های واسط آلوده به لینگواتولا سراتا با هماگلوتیناسیون غیر‌مستقیم

تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک
مقاله 6، دوره 35، شماره 2، تیر 1401، صفحه 49-56    اصل مقاله (513.64 K)
نوع مقاله: مقاله کامل
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/vj.2021.354863.1862
نویسندگان
علیرضا البرزی* 1؛ ماندانا حسینی2؛ سمیه بهرامی2؛ مسعود قربانپورنجف آبادی3؛ محمدرضا تابنده4
1بخش انگل شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2بخش انگل‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
3بخش ایمنی شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
4بخش بیوشیمی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
چکیده
این مطالعه به منظور تعیین شیوع آلودگی در گوسفندان و بزها با روش مشاهده‌ی انگل در غدد لنفاوی مزانتر و سنجش تیتر آنتی‌بادی با روش هماگلوتیناسیون غیرمستقیم و همچنین بررسی فعالیت کمپلمان سرم به روش کلاسیک و لیزوزیم صورت گرفته است. تعداد 791 نمونه‌ی خون و غدد لنفاوی مزانتر از گوسفندان (456) و بزهای (335) کشتار شده در کشتارگاه شهر اهواز (استان خوزستان) جمع‌آوری شد. نتایج حاصل نشان داد که 8/7 درصد از کل نشخوارکنندگان در تحقیق حاضر آلوده به لینگوآتولا سراتا بودند. میزان درصد آلودگی به تفکیک در گوسفندان 7/5 درصد و در بزها 7/10 درصد تخمین زده شد. در میزان فعالیت کمپلمان به روش کلاسیک و لیزوزیم بین گروه‌های آلوده و غیرآلوده در هر دو گروه حیوان تفاوت معنی‌داری مشاهده نشد. همچنین با استفاده از روش هماگلوتیناسیون غیرمستقیم علاوه بر مشخص نمودن دقیق نمونه‌های آلوده از غیرآلوده میزان IgG و IgM علیه لینگواتولا سراتا در سرم حیوانات نیز تخمین زده شد. میزان IgG در نمونه‌های آلوده بالاتر از میزان IgM بود و میزان این آنتی‌بادی‌ها در نمونه‌های غیرآلوده به میزان قابل توجهی پایین بود. در مجموع مطالعه‌ی حاضر نشان می‌دهد که این انگل در بدن میزبان واسط احتمالاً توانایی فرار از برخی از اجزای مهم سیستم ایمنی ذاتی (نظیر سیستم کمپلمان و لیزوزیم) را دارد. با اینکه نتایج مطالعه‌ی حاضر نشان داد که آلودگی به انگل باعث افزایش سطح برخی آنتی‌بادی‌ها می‌شود اما بنظر نمی‌رسد این تغییرات شرایط را برای از بین بردن انگل فراهم کند.
کلیدواژه‌ها
کمپلمان؛ لیزوزیم؛ لینگواتولا سراتا؛ میزبان واسط؛ هماگلوتیناسیون
عنوان مقاله [English]
Evaluation of complement and lysozyme activity and determination of antibody titers in the sera of Linguatula serrata -infected intermediate hosts by indirect hemagglutination
نویسندگان [English]
A Alborzi1؛ M Hosseini2؛ S Bahrami2؛ M Ghorbanpoor Najafabadi3؛ M.R Tabandeh4
1Department of Parasitology, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran
2Department of Parasitology, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran
3Department of Immunology, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran
4Department of Biochemistry, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran
چکیده [English]
This study was performed to determine the prevalence of Linguatula serrata in sheep and goats by observing the parasite in the mesenteric lymph nodes and measuring the antibody titer by indirect haemagglutination test and also evaluating the activity of serum complement activity by classical method and lysozyme. 791 samples of blood and mesenteric lymph nodes from sheep (456) and goats (335) were collected in the slaughterhouse of Ahvaz (Khuzestan province). The results showed that 7.8% of all ruminants in the present study were infected with L. serrata. There was no significant difference in the level of complement activity by classical method and lysozyme activity between infected and non-infected animals. Also, using an indirect haemagglutination test, in addition to accurately identifying infected samples from non-infected animals, the levels of IgG and IgM antibodies against L. serrata were estimated. IgG levels in infected samples were higher than IgM levels and the levels of these antibodies were significantly lower in non-infected samples. Overall, the present study suggests that this parasite in the intermediate host may escape from some important components of the innate immune system (such as the complement and lysozyme). Although the results of the present study showed that infection with the parasite increased the level of some antibodies, but these changes do not seem to provide the conditions for the eradication of the parasite.
کلیدواژه‌ها [English]
Complement, Haemagglutination, Intermediate host, Linguatula serrata, Lysozyme
مراجع

1. Alberts, B., A. Johnson, J. Lewis, P. Walter, M. Raff and K. Roberts. 2002. "Chapter 24: The Adaptive Immune System" . Molecular Biology of the Cell (4th ed.). Garland Science.  New York.
2. Alishahi, M. and K. Buchmann. 2006. Temperature-dependent protection against Ichthyophthirius multifiliis following immunisation of rainbow trout using live theronts. Diseases of Aquatic Organisms 72: 269-273.
3. Antonio, R., J. Manuel Molina, J. Gonzaleza, F. J. Martinez-morenob, P. N. Gutierrezb and A. Martinez-morenob. 2003. Humoral response (IgG) of goats experimentally infected with Fasciola hepatica against cysteine proteinases of adult fluke. Veterinary Research 34: 435–443.
4. Bergstrom, F. C., S. Reynolds, M. Johnstone, R. N. Pike, A. M. Buckle, D. J. Kemp, K. Fischer and A. M. Blom. 2009. Scabies mite inactivated serine protease paralogs inhibit the human complement system. Journal of immunology research. 182: 7809–7817. 
5. Bisset, S. A., A. Vlassoff, P. G. C. Douch, W. E. Jonas, C. J. West and R. S. Green. 1996. Nematode burdens and immunological responses following natural challenge in Romney lambs selectively bred for low or high faecal worm egg count. Veterinary Parasitology. 61: 249–263. 
6. Cornelissen, J.B., W. A. Leeuw and P. J. Vander heijden. 1992. Comparison of an indirect haemagglutination assay and an elisa for diagnosing Fasciola hepatica in experimentally and naturally infected sheep. Veterinary quarterly. 14(4): 152-156.
7. Deng, J., D. Gold, P. T. LoVerde and Z. Fishelson. 2007. Mapping of the complement C9 binding domain in paramyosin of the blood fluke Schistosoma mansoni. The International Journal for Parasitology. 37: 67–75. 
8. Desmonts, G. and J. S. Remington. 1980. Direct agglutination test for diagnosis of Toxoplasma infection: method for increasing sensitivity and specificity. Journal of Clinical Microbiology 11(6):562-8.
9. Drabick, J. J. 1987. Pentastomiasis. Reviews of infectious diseases 9:1087-1094.
10. Duffus, W.P., K. Thorne and R. Oliver. 1980. Killing of juvenile Fasciola hepatica by purified bovine eosinophil proteins. Clinical and Experimental Immunology 40:336–44.
11. Ellis, A. E. 1990. Lysozyme Assays. PP: 101-103. In: J.S. Stolen., T.C. Fletcher, D.P. Anderso, B. S. Roberson and W. B. Van Muiswinkel. Eds. Techniques in Fish Immunology, SOS Publications, Fair Haven.
12. Ellis, A. E. 2001. Innate host defense mechanisms of fish against viruses and bacteria. Developmental & Comparative Immunology 25: 827-839.
13. Gadjeva, M. G., M. M. Rouseva, A. S. Zlatarova, K. B. Reid, U. Kishore and M. S. Kojouharova. 2008. Interaction of human C1q with IgG and IgM: revisited. Biochemistry 47:13093–13102. 
14. Gül A., S. Değer and V Denizhan. 2009. The prevalence of Linguatula serrata (Fröhlich, 1789) nymphs in sheep in the Van province. Turkiye parazitolojii dergisi 33(1):25-7.
15. Hay, F. C., O. M. R. Westwood and P. N. Nelson. 2002. Practical Immunology4th edn. Blackwell Publishers.
16. Ikeda, T., I. Tada and Y. Aoki. 1978. The Indirect Hemagglutination Test for Onchocerciasis Performed with Blood Collected on Filter Paper. The Journal of Parasitology 64(5):786-789.
17. Kheirabadi, K.P., AA. Fallah, H. Azizi, AD. Samani and SD. Dehkordi. 2015. Prevalence of Linguatula serrata nymphs in sheeps in Isfahan province, southwest of Iran. Journal of Parasitic Diseases 39(3):518-21
18. Koehsler, M., J. Walocchnik, M. Georgopoulos, C. H. Pruente, W. Boeckeler, H. Auer and A. Barisani-Asenbauer. 2011.  Linguatula serrata tongue worm in human eye, Emerging Infectious Disease 17(5): 870-872.
19. Mirzaei, M., H. Asgarinezad, and H. Rezaeisaghinsara.2011. A survey of Linguatula serrata infection in sheep in Tabriz abattoir, East Azarbaijan Province. Journal of Veterinary Laboratory Research 3(1): 69-75.
20. Motran, C. C., L. F. Ambrosio, X. Volpini, D. P. Celias and L. Cervi. 2017. Dendritic cells and parasites: from recognition and activation to immune response instruction. Seminars in Immunopathology 39: 199–213.
21. Norynska, M. R., R. Sokol and A. K. Siwick. 2014. Selected blood immunological and biochemical parameters in horses infected with Cyathostominae before and afer ivermectin treatment. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences 38: 394-397.
22. Nur Eris, F., C. Akisu and Aksoy. U. 2009. Evaluation of Two ELISA and Two Indirect Hemagglutination Tests for Serodiagnosis of Pulmonary Hydatid Disease. The Korean Journal of Parasitology 47(4): 427-429.
23. Prokopowicz, D. and M. Trippner. 1983. Some indices of organ reactivity in experimental trichinellosis. II. Lysozyme activity in trichinellosis in rabbits. Zentralblatt für Bakteriologie, Mikrobiologie und Hygiene, Serie A 255(4):560-5.
24. Prowse, R. K., P. Chaplin, H. C. Robinson and T.W. Spithill. 2002. Fasciola hepatica cathepsin L suppresses sheep lymphocyte proliferation in vitro and modulates surface CD4 expression on human and ovine T cells. Parasite Immunology 2:57–66.
25. Ravindran, R., B. Lakshmanan, C. Ravishankar and H. Subramanian.2008. Prevalence of Linguatula serrata in domestic ruminants in South India. Southeast Asian Journal of Tropical Medicine and Public Health.39(5):808-12.
26. Rezaei, H., J. Ashrafihelan, A. Nematollahi, and E. Mostafavi. 2012.The prevalence of Linguatula serrata nymphs in goats slaughtered in Tabriz, Iran. Journal of Parasitic Diseases 36(2): 200-202. 
27. Shamsi, S. h., k. McSpadden and S. Baker. 2017. Occurrence of tongue worm, Linguatula serrata (Pentastomida: Linguatulidae) in wild canids and livestock in south-eastern Australia. International Journal for Parasitology-Parasites and Wildlife 6(3):271-277.
28. Skouras, A., V. Schmidt, W. Körting and D. Steinhagen. 2003. Note: the effect of parasite infection on the innate immune response of European flounder (Platichthys flesus L.) in the southern North Sea. Helgoland marine research. 57(3-4), 176-180.
29. Tabaripour, R., M. Fakhar, A. Alizadeh, MR. Youssefi, R. Tabaripour, SH. Teshnizi and M. Sharif. 2017. Prevalence and histopathological characteristics of Linguatula serrata infection among slaughtered ruminants in Mazandaran Province, northern Iran. Comparative Clinical Pathology 26(6):1259-65.
30. Yousefnezhad, K. 2017. Evaluation of indirect haemagglutination test for serological detection of Linguatula serrata infection in goat using the parasite nymphal excretory-secretory and somatic antigens. MSc thesis. Shahid Chamran University. Ahvaz, Iran. 
31. Zhao, L., S. Shao, Y. Chen, X. Sun, R. Sun, J. Huang, B. Zhan and X. Zhu. 2017. Trichinella spiralis calreticulin binds human complement C1q as an immune evasion strategy. Frontiers in Immunology. 8:636.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 495
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 430


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب