
بررسی اثر ترمیمی سلولهای بنیادی مزانشیمی جدا شده از مغز استخوان بر فیبروز کبدی القا شده با تیواستامید در موش صحرایی | ||
Archives of Razi Institute | ||
Article 8, Volume 74, Issue 3, January 0, Pages 279-286 PDF (1.8 M) | ||
Document Type: مقالات پژوهشی | ||
DOI: 10.22092/ari.2018.110029.1120 | ||
Abstract | ||
مطالعه حاضر اثر ترمیمی سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان را بر فیبروز کبد القا شده با تیو استامید در موش صحرایی را بررسی می کند. سی سر موش صحرایی نر از نژاد ویستار به صورت تصادفی در دو گروه شاهد و درمان تقسیم بندی شدند. موشهای گروه شاهد خود به سه زیر گروه تقسیم شده و در هفته های 14، 18 و 20 بعد از القای فیبروز نمونه برداری گردیدند. موشهای صحرایی گروه درمان به دو زیر گروه تقسیم و در هفته های 4 و 6 بعد از درمان به سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان نمونه برداری گردیدند. فیبروز از طریق تزریق داخل صفاقی به میزان mg/kg 200 تیو استامید، دو بار در هفته و به مدت 14 هفته القا شده بود صورت گرفت. چهار و 6 هفته بعد از پیوند سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان، تمامی موشهای صحرایی تحت آزمایش عملکرد کبد و بررسی هیستوپاتولوژیکی قرار گرفتند. سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان از طریق القای استئوژنیک و با استفاده از RT-PCR شناسایی شدند. تمامی سلولها به کف فلاسک متصل و دوکی شکل بودند و در تمایز استئوژنیک مثبت شدند. آنها CD73 را بیان کردند و برای CD45 منفی بودند. بعد از تجویز تیواستامید نفوذ سلولهای التهابی مشاهده و ظهور رشتههای کلاژن قابل ملاحظه بود. چهار هفته بعد از پیوند سلولی، کاهش قابل توجهی در سلولهای التهابی دیده شد و فرآیند بهبودی چشمگیر بوده است. شش هفته بعد از سلول درمانی ترمیم بافت کبد قابل توجه بوده است. بعد از تزریق سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان، سطح AST قابل توجه نبوده ولی این کاهش در سطح ALT قابل توجه بود. سطوح ALP و آلبومین رشد فزایندهای را بعد از سلول درمانی نشان دادند. پیوند سلولهای بنیادی جدا شده از مغز استخوان با موفقیت منجر به اثرات ترمیمی در جراحات کبدی شده است، لذا نشان داده شد که سلول درمانی میتواند دریچهای جدید در درمان و تخفیف فیبروز کبدی ایفا نماید. | ||
Keywords | ||
مغز استخوان; سلولهای بنیادی مزانشیمی; کبد; تیو استامید; فیبروز; موش صحرایی | ||
References | ||
Abdel Aziz, M.T., Atta, H.M., Mahfouz, S., Fouad, H.H., Roshdy, N.K., Ahmed, H.H., et al., 2007. Therapeutic potential of bone marrow-derived mesenchymal stem cells on experimental liver fibrosis. Clin Biochem 40, 893-899.
Ahmed, S.K., Mohammed, S.A., Khalaf, G., Fikry, H., 2014. Role of Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in the Treatment of CCL4 Induced Liver Fibrosis in Albino Rats: A Histological and Immunohistochemical Study. Int J Stem Cells 7, 87-97.
Bataller, R., Brenner, D.A., 2005. Liver fibrosis .J Clin Invest 115, 209-218.
Bruck, R., Weiss, S., Traister, A., Zvibel, I., Aeed, H., Halpern, Z., et al., 2007. Induced hypothyroidism accelerates the regression of liver fibrosis in rats. J Gastroenterol Hepatol 22, 2189-2194.
Chen, Y.W., Tsai, M.Y., Pan, H.B., Tseng, H.H., Hung, Y.T., Chou, C.P., 2014. Gadoxetic acid-enhanced MRI and sonoelastography: non-invasive assessments of chemoprevention of liver fibrosis in thioacetamide-induced rats with Sho-Saiko-To. PLoS One 9, e114756.
Chilakapati, J., Shankar, K., Korrapati, M.C., Hill, R.A., Mehendale, H.M., 2005. Saturation toxicokinetics of thioacetamide: role in initiation of liver injury. Drug Metab Dispos 33, 1877-1885.
Davarpanah, M.A., Saberi-Firouzi, M., Lankarani, K.B., Mehrabani, D., Behzad-Behbahani, A., Serati, A., et al., 2009. Hepatitis C virus genotype distribution in Shiraz, Southern Iran. Hepat Mon 9, 122-127.
Dehghani, S.M., Gholami, S., Bahador, A., Haghighat, M., Imanieh, M.H., Nikeghbalian, S., et al., 2007. Comparison of Child-Turcotte-Pugh and pediatric end-stage liver disease scoring systems to predict morbidity and mortality of children awaiting liver transplantation. Transplant Proc 39, 3175-3177.
Dekel, R., Zvibel, I., Brill, S., Brazovsky, E., Halpern, Z., Oren, R., 2003. Gliotoxin ameliorates development of fibrosis and cirrhosis in a thioacetamide rat model. Dig Dis Sci 48, 1642-1647.
Fang, B., Shi, M., Liao, L., Yang, S., Liu, Y., Zhao, R.C., 2004. Systemic infusion of FLK1(+) mesenchymal stem cells ameliorate carbon tetrachloride-induced liver fibrosis in mice. Transplantation 78, 83-88.
Farjam, M., Dehdab, P., Abbassnia, F., Mehrabani, D., Tanideh, N., Pakbaz, S., et al., 2012. Thioacetamide-Induced Acute Hepatic Encephalopathy in Rat: Behavioral, Biochemical and Histological Changes. Iran Red Crescent Med J 14, 70-164.
Farjam, M., Mehrabani, D., Abbassnia, F., Tanideh, N., Imanieh, M.H., Pakbaz, S., et al., 2014. The healing effect of Curcuma longa on liver in experimental acute hepatic encephalopathy of rat. Comp Clin Path 23, 1669-1673.
Ghobadi, F., Mehrabani, D., Mehrabani, G., 2015. Regenerative potential of endometrial stem cells: a mini review. World J Plast Surg 4, 1-6.
Higashiyama, R., Moro, T., Nakao, S., Mikami, K., Fukumitsu, H., Ueda, Y., et al., 2009. Negligible contribution of bone marrow-derived cells to collagen production during hepatic fibrogenesis in mice. Gastroenterology 137, 1459-1466 e1.
Huang, C.K., Lee, S.O., Luo, J., Wang, R., Dang, Q., Chang, C., 2014. A mouse model of liver injury to evaluate paracrine and endocrine effects of bone marrow mesenchymal stem cells. Methods Mol Biol 1213, 69-79.
Jang, Y.O., Kim, M.Y., Cho, M.Y., Baik, S.K., Cho, Y.Z., Kwon, S.O., 2014. Effect of bone marrow-derived mesenchymal stem cells on hepatic fibrosis in a thioacetamide-induced cirrhotic rat model. BMC Gastroenterol 14, 198.
Kuo, T.K., Hung, S.P., Chuang, C.H., Chen, C.T., Shih, Y.R., Fang, S.C., et al., 2008. Stem cell therapy for liver disease: parameters governing the success of using bone marrow mesenchymal stem cells. Gastroenterology 134, 2111-2121.
Kuroda, K., Terao, K., Akao, M., 1987. Inhibitory effect of fumaric acid on hepatocarcinogenesis by thioacetamide in rats. J Natl Cancer Inst 79, 1047-1051.
Mehrabani, D., Mehrabani, G., Zare, S., Manafi, A., 2013. Adipose-Derived Stem Cells (ADSC) and Aesthetic Surgery: A Mini Review. World J Plast Surg 2, 65-70.
Mehrabani, D., Mojtahed Jaberi, F., Zakerinia, M., Hadianfard, M.J., Jalli, R., Tanideh, N., et al., 2016. The Healing Effect of Bone Marrow-Derived Stem Cells in Knee Osteoarthritis: A Case Report. World J Plast Surg 5, 168-174.
Meier, R.P., Mahou, R., Morel, P., Meyer, J., Montanari, E., Muller, Y.D., et al., 2015. Microencapsulated human mesenchymal stem cells decrease liver fibrosis in mice. J Hepatol 62, 634-641.
Mostaghni, A.A., Soltanian, A., Mokhtari, E., Japoni, S., Mehrabani, D., 2011. Seroprevalence of hepatitis B virus among hemodialysis patients in Bushehr province, southern Iran: HBV seroprevalence in hemodialysis patients. Hepat Mon 11, 200-202.
Okura, H., Soeda, M., Morita, M., Fujita, M., Naba, K., Ito, C., et al., 2015. Therapeutic potential of human adipose tissue-derived multi-lineage progenitor cells in liver fibrosis. Biochem Biophys Res Commun 456, 860-865.
Ortiz, L.A., Dutreil, M., Fattman, C., Pandey, A.C., Torres, G., Go, K., et al., 2007. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci USA 104, 11002-11007.
Piryaei, A., Valojerdi, M.R., Shahsavani, M., Baharvand, H., 2011. Differentiation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells into hepatocyte-like cells on nanofibers and their transplantation into a carbon tetrachloride-induced liver fibrosis model. Stem Cell Rev 7, 103-118.
Russo, F.P., Alison, M.R., Bigger, B.W., Amofah, E., Florou, A., Amin, F., et al., 2006. The bone marrow functionally contributes to liver fibrosis. Gastroenterology 130, 1807-1821.
Togel, F., Weiss, K., Yang, Y., Hu, Z., Zhang, P., Westenfelder, C., 2007. Vasculotropic, paracrine actions of infused mesenchymal stem cells are important to the recovery from acute kidney injury. Am J Physiol Renal Physiol 292, F1626-1635. | ||
Statistics Article View: 3,239 PDF Download: 3,222 |