| تعداد نشریات | 282 |
| تعداد نشریات سازمان | 80 |
| تعداد شماره‌ها | 3,251 |
| تعداد مقالات | 35,917 |
| تعداد مشاهده مقاله | 54,568,951 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 93,691,849 |
Detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae among Commercial Poultry in Khouzestan Province, Iran | ||
| Archives of Razi Institute | ||
| مقاله 8، دوره 73، شماره 2، شهریور 2018، صفحه 139-146 اصل مقاله (483.54 K) | ||
| نوع مقاله: Short Communication | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ari.2018.116164 | ||
| نویسندگان | ||
| R. Ghadimipour* 1؛ D. Gharibi2؛ M. Mayahi3 | ||
| 1Razi Vaccine and Serum Research Institute | ||
| 2Department of Pathobiology, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran | ||
| 3Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran | ||
| چکیده | ||
| Mycoplasmas are important avian pathogens, which can cause both respiratory disease and synovitis in poultry that result in considerable economic losses to the poultry industry all over the world. The aim of this study was to determine the prevalence of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae infections among commercial poultry flocks in Khouzestan province, Iran, using the polymerase chain reaction (PCR) technique. Totally, 290 tracheal swab samples were collected from 19 broiler flocks and 4 layer-breeder flocks, with or without respiratory signs, in different areas of Khouzestan province within six months. The PCR tests were applied for the specific amplification of 16S rRNA (185 bp) and vlhA (392 bp) genes. Out of 100 swab samples obtained from the layer-breeder flocks, 1 and 72 specimens were positive for M. gallisepticum and M. synoviae, respectively. In this regard, out of the 4 layer-breeder flocks, 1 (25%) and 4 (100%) flocks were positive for M. gallisepticum and M. synoviae, respectively. However, none of the studied broiler flocks were M. gallisepticum- or M. synoviae-positive. According to the results, the PCR technique could be concluded as a rapid method for the accurate identification of M. gallisepticum and M. synoviae infections in commercial poultry flocks. The results were indicative of the low prevalence of M. gallisepticum in the studied flocks in Khouzestan province. On the other hand, M. synoviae was widely distributed among layer-breeder flocks in this province. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| Mycoplasma gallisepticum؛ Mycoplasma synoviae؛ Poultry؛ PCR؛ Khouzestan | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| شناسایی مایکوپلاسما گالیسپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه در ماکیان صنعتی استان خوزستان، ایران | ||
| نویسندگان [English] | ||
| رحیم قدیمی پور1؛ داریوش غریبی2؛ منصور میاحی3 | ||
| 2دانشگاه شهید چمران اهواز | ||
| 3دانشگاه شهید چمران اهواز | ||
| چکیده [English] | ||
| مایکوپلاسماها از عوامل مهم بیماریزای طیور در بسیاری از نقاط جهان به شمار میروند که میتوانند منجر به بیماری تنفسی و نیز التهاب سینوویت مفاصل در ماکیان شده و خسارات اقتصادی قابل توجهی را به صنعت پرورش این پرندگان وارد نمایند. هدف پژوهش حاضر بررسی میزان شیوع عفونت با مایکوپلاسما گالیسپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه در گلههای ماکیان صنعتی استان خوزستان با استفاده از تکنیک واکنش زنجیرهای پلیمراز بود. بدین منظور بعد از جمعآوری تعداد 290 نمونه سواب نایی از 19 گله مرغ گوشتی و 4 گله مرغ مادر تخمگذار، آزمایشهای واکنش زنجیرهای پلیمراز با تکثیر اختصاصی ژنهای 16S rRNA(185 جفت باز) و vlhA(392 جفت باز) بکار گرفته شدند. بر اساس نتایج این مطالعه، از 100 نمونه حاصل از گلههای مرغ مادر تخمگذار به ترتیب 1 (1%) و 72 (72%) نمونه از نظر مایکوپلاسما گالیسپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه مثبت بوده و حاکی از آلودگی 25% و 100% این گلهها به ارگانیسمهای فوقالذکر بود. همچنین یافتههای ما مشخص نمود که هیچکدام از گلههای مرغ گوشتی تحت بررسی آلوده به مایکوپلاسما گالیسپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه نیستند. نتایج بررسی حاضر نشان میدهد که تکثیر ژنهای اختصاصی با استفاده از تکنیک واکنش زنجیرهای پلیمراز به عنوان روشی سریع جهت تشخیص دقیق عفونتهای مایکوپلاسمایی تحت مطالعه در گلههای ماکیان صنعتی به شمار میرود. بر اساس یافتههای مطالعه جاری، شیوع مایکوپلاسما گالیسپتیکوم در گلههای مورد بررسی در استان خوزستان پایین میباشد در حالیکه مایکوپلاسما سینوویه به طور وسیعی در گلههای مرغ مادر تخمگذار این استان شایع است. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| مایکوپلاسما گالی سپتیکوم, مایکوپلاسما سینوویه, ماکیان, واکنش زنجیره ای پلیمراز, خوزستان | ||
| مراجع | ||
|
Avakian, A. P., Kleven, S. H., 1990. The humoral immune response of chickens to Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae studied by immunoblotting.Vet Microbiol 24, 155-169.
Barua, S.R., Prodhan, A.M., Islam, S., Chawdhury, S., 2006. Study on Mycoplasma gallisepticumin chicken. Bangladesh J Vet Med 4, 141-142.
Buim, M.R., Mettifogo, E., Timenetsky, J., Kleven, S., Ferreira, A.J.P., 2009. Epidemiological survey on Mycoplasma gallisepticumand Mycoplasma synoviaeby multiplex PCR in commercial poultry. Pesquisa Veterinaria Brasileira 29, 552-556.
Dufour-Gesbert, F., Dheilly, A., Marois, C., Kempf, I., 2006. Epidemiological study on Mycoplasma synoviae infection in layers. Vet Microbiol 114, 148-154.
Feberwee, A., Mekkes, D.R., de Wit, J.J., Hartman, E.G., Pijpers, A., 2005. Comparison of culture, PCR, and different serologic tests for detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae infections. Avian Dis 49, 260-268.
Feberwee, A., De Vries, T.S., Landman, W.J.M., 2008.Seroprevalence of Mycoplasma synoviaein Dutch commercial poultry farm. Avian Pathol 37, 629-633.
Grodio, J.L., Dhondt, K.V., O’Connell, P.H., Schat, K.A., 2008. Detection and quantification of Mycoplasma gallisepticum genome load in conjunctival samples of experimentally infected house finches (Carpodacusmexicanus) using real-time polymerase chain reaction. Avian Pathol37, 385-391.
Haghighi-Khoshkhoo, P., Akbariazad, G., Roohi, M., Inanlo, I., Masoumi, M., Sami-Yousefi, P., 2011. Seroprevalence of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae infection in the commercial layer flocks of the Centernorth of Iran. African J Microbiol Res 5(18), 2834-2837.
Haque, E., Uddin, G., Akter, S., 2015. Prevalence of mycoplasmosis of chickens at Kotwali Thana in Chittagong, Bangladesh. J Fisheries Livest Prod 3, 1-3.
Hess, M., Neubauer, C., Hackl, R., 2007.Interlaboratory comparison of ability to detect nucleic acid of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae by polymerase chain reaction. Avian Pathol36, 127-133.
Hosseini Aliabad, S.A., Pourbakhsh, S.A., Charkhkar, S., BozorgmehriFard, M.H., Shikhi, N., 2012. Molecular study and phylogenetic analysis of Mycoplasma synoviaeisolated from poultry flocks from Mazandran Province of Iran. African J Biotechnol 11(8), 2124-2129.
Jeffery, N., Gasser, R.B., Steer, P.A., Noormohammadi, A.H., 2007. Classification of Mycoplasma synoviae strains using singlestrand conformation polymorphism and highresolution melting-curve analysis of the vlhA gene single copy region. Microbiol 153, 2679-2688.
Kempf, I.,Gesbert, F., Guittet, M., Bennejean, G., 1994. Mycoplasma gallisepticum infection in drug-treated chickens: comparison of diagnosis methods including polymerase chain reaction. Zentralbl Veterinarmed B 41(9), 597-602.
Kempf, I., 1998. DNA amplification methods for diagnosis and epidemiological investigations of avian mycoplasmosis. Avian Pathol 27, 7-14.
Khalda, A.K., Rahman, M.B., Amal, M.M., 2008. Isolation, identification and molecular detection of Mycoplasma gallisepticum in breeder poultry farm in Khartoum state, Sudan. Sudan J Vet Res 23, 65-71.
Köhn, S., Spergse, J., Ahlers, C., Voss, M., Bartels, T., Rosengarten, R., Krautwald-Junghanns, M.E., 2009. Prevalence of Mycoplasmas in commercial layer flocks during laying period. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 122, 186-192.
Lierz, M., Hagen, N., Lueschow, D., Hafez, H.M., 2008. Use of polymerase chain reactions to detect Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma imitans, Mycoplasma iowae, Mycoplasma meleagridis and Mycoplasma synoviae in birds of prey. Avian Pathol 37(5), 471-476.
Liu, T., Garcia, M., Levisohn, S., Yogev, D., Kleven, S., 2001. Molecular variability of the adhesion-encoding Gene pvpAamong Mycoplasma gallisepticum strains and its application in diagnosis. J Clin Microbiol 39, 1882-1888.
Lockaby, S.B.,Hoerr, F.J., Lauerman, L.H., Kleven, S.H., 1998. Pathogenicity of Mycoplasma synoviae in broiler chickens.Vet Pathol 35, 178-190.
Markey, B.K., Leonard, F.C., Archambault, M., Cullinane, A., Maguire D., 2013. Clinical Veterinary Microbiology. Edinburgh, The CV Mosby Company, 2thedition, pp: 423-431.
Nascimento, E.R., Yamamoto, R., Herrick, K.R., Tait, R.C., 1991. Polymerase chain reaction for detection of Mycoplasma gallisepticum. Avian Dis 35, 62-69.
Nascimento, E. R., Pereira, V. L. A., Nascimento, M. G. F., Barreto, M. L., 2005. Avian mycoplasmosis update. Brazilian J Poult Sci 7(1), 1-9.
Rachida, A., Omar, B., ElHacène, B., Rachid, K., Mohamed Cherif, A.J., 2013. Serological investigation on avian mycoplasmosis in laying hen farm. Synoviae in Eastern Algeria. IJAVM. SYNOVIAE 7(5), 170-177.
Saâdia, N., Rachid, A., Falak, A., Naoufal, R., Idriss, L.A., Ouafaa, F.F., Mohammed, E.H., 2014. Detection of Mycoplasma synoviae infection in broiler breeder far M. synoviae of Morocco using serological assays and real time PCR. J Life Sci 8, 815-821. Sarkar, S.K., Rahman, M.B., Khan, M.F.R., 2005. Sero-Prevalence of Mycoplasma gallisepticum infection of chickens in model breeder poultry farm. Synoviae of Bangladesh. Int J Poult Sci 4, 32-35.
Seifi, S., Shirzad, M.R., 2012. Incidence and risk factors of Mycoplasma synoviae infection in broiler breeder farm. Synoviae of Iran. Vet World 5(5), 265-268.
Suzuki, K., Origlia, J., Alvarez, F., Faccioli, M., Silva, M., Caballero, J., Nunrez,L., Castro, L., 2009. Relative risk estimation for Mycoplasma synoviaein backyard chickens in Paraguay. Int J Poult Sci 8, 842-847.
Tebyanian, H., Mirhosseiny, S.H., Kheirkhah, B., Hassanshahian, M., Farhadian, H., 2014. Isolation and identification of Mycoplasma synoviaefrom suspected ostriches by polymerase chain reaction, in Kerman province, Iran. Jundishapur J Microbiol 7(9), e19262.
Yilmaz, F., Timurkaan, N., 2011. Detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae antigens by immunohistochemical method in pneumonic broiler chicken lungs. J AnimVet Adv 10(19), 2557- 2560. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 4,644 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 4,551 |
||