| تعداد نشریات | 282 |
| تعداد نشریات سازمان | 80 |
| تعداد شمارهها | 3,219 |
| تعداد مقالات | 35,690 |
| تعداد مشاهده مقاله | 53,563,017 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 92,843,289 |
ارزیابی توان آنتاگونیستی سودوموناسهای فلورسنت ریزوسفر سیبزمینی در کنترل Ralstonia solanacearum در شرایط گلخانه | ||
| آفات و بیماری های گیاهی | ||
| مقاله 3، دوره 85، شماره 2 - شماره پیاپی 105، اسفند 1396، صفحه 155-166 اصل مقاله (1 M) | ||
| نوع مقاله: مدیریت آفات و بیماریهای گیاهی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/jaep.2017.108372.1137 | ||
| نویسندگان | ||
| المیرا حسنی1؛ غلامرضا خداکرمیان* 2 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیماریشناسی گیاهی؛ گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران | ||
| 2استاد؛ گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران | ||
| چکیده | ||
| این پژوهش، با هدف ارزیابی توان آنتاگونیستی باکتریهای Pseudomonas fluorescent علیه Ralstonia solanacearum عامل پژمردگی باکتریایی سیبزمینی در گلخانه انجام شد. تعداد 80 استرین سودوموناس روی محیط کشت King,s B از خاک پیرامون ریشه و غده سالم گردآوری شده از 10 مزرعه جدا شد. باکتریR. solanacearum از سیبزمینی آلوده روی محیط کشت اختصاصی دارای تری فنیل تترازولیوم کلراید (TTC) جداسازی شد. توانایی استرینهای باکتریهای P. fluorescent در جلوگیری از رشد بیمارگر با استفاده از آزمون کشت سه نقطهای و اندازهگیری هاله بازدارنده در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار بررسی شد. نتایج نشان داد که استرینهای EH87، EH203 با میانگین قطر هاله بازدارنده 3.78 و 3.65 سانتیمتر و استرینهای EH27 و EH40 با میانگین قطر هاله بازدارنده 1.85 و 1.54 سانتیمتر به ترتیب بیشترین و کمترین درصد بازدارندگی از رشد را نشان دادند. بر مبنای نتیجه آزمایش بازدارندگی در آزمایشگاه از میان استرینهای بررسی شده، تعداد نه استرین به عنوان نماینده برای بررسیهای گلخانهای انتخاب شدند. نتایج تعیین ویژگیهای فنوتیپی و واکنش فوق حساسیت در برگهای توتون نشان داد که این نه استرین به گونههای Pseudomonas putida و بیووارهای یک، دو و چهارP. fluorescens تعلق دارند. توان آنتاگونیستی استرینهای سودوموناسهای فلورسنت علیه باکتریR. solanacearum در شرایط گلخانه با روش آغشتهسازی نشاء در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با سه تکرار بررسی و فاکتورهای رشد پس از سه ماه اندازهگیری و ثبت شد. نتایج نشان داد که استرینهای EH70، EH49 کارایی بیوکنترلی بالایی نسبت به شاهد آلوده داشته و توانستند به ترتیب میزان بیماری را 84 و 75 درصد کاهش دهند. ژنهای کد کننده 16SrRNA استرینهای برگزیده با استفاده از پرایمرهای همگانی توسط PCR تکثیر و سپس توالی یابی شد. نتایج نشان داد که استرین EH53، 98 درصد به باکتریهای، Pseudomonas fluoresent شباهت دارد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| کنترل بیولوژیک؛ سیبزمینی؛ Pseudomonas fluorescens؛ Ralstonia solanacearum | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Assessment of antagonistic activity of fluorescent pseudomonads isolated from potato rhizospher towards Ralstonia solanacearum under greenhouse conditions | ||
| نویسندگان [English] | ||
| E. HASANI1؛ GH. KHODAKARAMIAN2 | ||
| 1Bou Ali Sina of Hamadan University-Faculty of Agriculture | ||
| چکیده [English] | ||
| This study was conducted to evaluate of the antagonistic activity of fluorescent pseudomonads against Ralstonia solanacearum in greenhous. A total of 80 strains of fluorescent pseudomonads were isolated from the soil around the healthy potato roots and tubers collected from 10 farms on King, s B medium (KB). The bacterial R. solanacearum strains were isolated on nutreient agar (NA) medium containing triphenyltetrazolium chloride (TTC). Antagonistic activity of pseudomonads strains was evaluated in a completed randomized design with three replicates in vitro. The bacterial strains EH87 and EH203 with 3.78 and 3. 65 cm growth inhibition zone were the most effective and EH27 and EH40 strain with 1. 85 and 1.54 cm had the least effect. The phenotypic feature of the antagonistic representative’s strains and their hypersensitive reaction on tobacco leaf showed that they were belonged to Pseudomonas putida and P. fluorescens (bv. I, II & IV). Based on the result of laboratory experiment nine representative strains were selected for further studies in a randomized design under greenhouse condition. After three months, growth factors of the plants and disease severity were measured and recorded. Results showed that EH70, EH49 bacterial strains had a high biocontrol effect in compare to contaminated control. They reduced the potato wilt disease caused by R. solanacearum 84% and 75% respectively. Total DNA from antagonistic representaives strains were used as a template to amplify 16SrRNA encoding gene using universal primers in PCR. Results showed that the strain EH53 had 98 percent sequence similarity to Pseudomonas fluoresens. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| biological control, Potato, Pseudomonas fluorescent, Ralstonia solanacearum | ||
| مراجع | ||
|
ABDELGHAFAR, N. Y. and W. M. ABDELSAYED, 1997. Biological control of bacterial soft rot of potato by using fluorescent pseudomonads. Arab Universities Journal of Agricultural Sciences, Egypt.
AYER, S. H., P. RUPP and W. T. JOHNSON, 1919. A study of alkali-forming bacteria in milk. U. S. Dept. Agric. Bull. 782.
BENEDUZI, A., A. AMBROSINI and L. M. PASSAGLIA, 2012. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): their potential as antagonists and biocontrol agents. Genetics and Molecular Biology, 35: 1044-1051.
CHAMPOISEAU, P. G., J. B. JONES and C. ALLEN, 2009. Ralstonia solanacearum race 3 biovar 2 causes tropical losses and temperate anxieties. Plant Health Progress, 10: 1-10.
CHAMPOISEAU, P. G., J. B. JONES, T. M. MOMOL, J. PINGSHENG, C. ALLEN, D. J. NORMAN, K. CALDWELL, 2010. Ralstonia solanacearum Race 3 biovar 2 causing brown rot of potato, bacterial wilt of tomato and southern wilt of geranium [Online]. Available at http://plantpath.ifas.ufl.edu/rsol/ NRI_Project/Projectsummary.html, (Accessed 25 June 2010), American Phytopathological Society. Madison, WI.
CRONIN, D., Y. MOËNNE-LOCCOZ, A. FENTON, C. DUNNE, D. N. DOWLING and F. O'GARA, 1997. Ecological interaction of a biocontrol Pseudomonas fluorescens strain producing 2, 4- diacetylphloroglucinol with the soft rot potato pathogen Erwinia carotovora subsp. atroseptica. FEMS Microbiology Ecology, 23: 95-106.
DENNY, T. 2007. Plant pathogenic Ralstonia species. In Plant-associated bacteria (pp. 573-644). Springer Netherlands.
DRANCOURT, M., C. BOLLET, A. CARLIOZ, R. MARTELIN, J. P. GAYRAL and D. RAOULT, 2000. 16S ribosomal sequence analysis of a large collection of environmental and clinical unidentifiable bacterial isolates. Journal of Clinical Microbiology, 38: 3623-3630.
FRAVEL, D. R. 1988. Role of antibiosis in the biocontrol of plant diseases. Annual Review of Phytopathology, 26: 75-91.
FRENCH E. R. 1994. Strategies for integrated control of bacterial wilt of potatoes. In: Hayward AC, Hartman GL (eds) Bacterial wilt. The disease and its causative agent, Pseudomonas solanacearum. CAB International, Wallingford, Oxon UK, pp 199 – 207.
GRAHAM, D. C. and W. HODGKISS, 1967. Identity of gram negative, yellow pigmented, fermentative bacteria isolated from plants and animals. Journal of Applied Bacteriology, 30: 175-189.
HALLMANN, J. A. QUADT-HALLMANN, W. F. MAHAFFEE and J. W. KLOEPPER, 1997. Bacterial endophytes in agricultural crops. Canadian Journal of Microbiology, 43: 895-914.
HAYWARD, A. C. 1991. Biology and epidemiology of bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum. Annual Review of Phytopathology, 29: 65-87.
HENOK, K., A. FASSIL and H. YAYNU, 2007. Evaluation of of Pseudomonas fluorescens isolates as biocontrol agents against bacterial wilt caused by Ralstonia (Pseudomonas) solanacearum. Pest Management Journal of Ethiopia, 11: 9-18.
HUGH, R. and E. LEIFSON, 1953. The taxonomic significance of fermentative versus oxidative metabolism of carbohydrates by various Gram-negative bacteria. Journal of Bacteriology, 66: 24.
KEEL, C. and G. DEFAGO, 1997. Interactions between beneficial soil bacteria and root pathogens: mechanisms and ecological impact, In Gange, A. C. and Brown, V. K. (eds.), Multitrophic interactions in terrestrial systems. Blackwell Scientific Publishers, London, United Kingdom. pp. 27-46.
KLEMENT, Z., G. L. FARKAS and L. LOVREKOV, 1964. Hypersensitive reaction induced by phytopathogenic bacteria in tobacco leaf. Phytopathology, 54: 474.
KLEMENT, Z., K. RUDOLPH and D. C. SAND, 1990. Methods inphytobacteriology. Akademiai Kiado Budapest, 540 pp.
KAJEHPOUR, M. 2012. Industerial Plants. Iran Isfahan University Jahad publication, 582 pp.
KOVACS, N. 1956. Identification of Pseudomonas pyocyanea by the oxidase reaction. Nature, 178: 703.
LELLIOT, R. A. and R. S. DICKEY, 1984. Genus VII Erwinia, In: Krieg, eds. N. R., Halt, J. G. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, Williams and Wilkins Co., The Baltimore Vol, 1: 469-476.
LEMESSA, F. and W. ZELLER, 2007. Screening rhizobacteria for biological control of Ralstonia solanacearum in Ethiopia. Biological Control, 42: 336-344.
LEONG, J. 1986. Siderophore: their biochemistry and possible role in the biocontrol of plant pathogens. Annual Review of Phytopathology, 24: 187-209.
LIU, Q. G., Z. LI, Z. TANG and X. M. ZENG, 1999. “Control of tobacco bacterial wilt with antagonistic bacteria and soil amendment”. Chinese Journal of Biological Control 15: 94-95.
MAC FADDIN, J. F. 1980. Biochemical Test for Identification of Medical Bacteria. Williams and Wilkins, Baltimore.
PARK, E. J., S. D. LEE, E. J. CHUNG, M. H. LEE, H. Y. UM, S. MURUGAIYAN and S. W. LEE, 2007. MicroTom-A model plant system to study bacterial wilt by Ralstonia solanacearum. The Plant Pathology Journal, 23: 239-244.
PICARD, C. DI., F. CELLO, M. VENTURA, R. FANI and A. GUCKERT, 2000. Frequency and biodiversity of 2, 4-diacetylphloroglucinol-producing bacteria isolated from the maize rhizosphere at different stages of plant growth. Applied and Environmental Microbiology, 66: 948-955.
PRABHAT, N. J., G. GARIMA, J. PRAMEELA and R. MEHROTRA, 2013. Association of rhizospheric/endophytic bacteria with plants: A potential gateway to sustainable agriculture. Greener Journal of Agricultural Sciences, 3: 073-084.
PRIOU, S. 2004. Integrated management of bacterial wilt and soil-borne diseases of potato in farmer communities of the inter-Andean valleys of Peru and Bolivia. Final Technical Report DFID-funded project CRF 7862(C). Lima: CIP.
RAN, L. X., C. Y. LIU, G. J. WU, L. C. VAN LOON and P. A. H. M. BAKKER, 2005. Suppression of bacterial wilt in Eucalyptus urophylla by fluorescent Pseudomonas spp. in China. Biological Control, 32: 111-120.
RYAN, A. D., L. L. KINKEL and J. L. SCHOTTEL, 2004. Effect of pathogen isolate, potato cultivar and antagonist strain on potato scab severity and biological control. Biochemical Science and Technology, 14: 301-311.
SCHAAD, N. W., J. B. JONES and W. CHUN, 2001. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, 373 pp.
SCHIPPERS, B., A. W. BAKKER and P. A. BAKKER, 1987. Interactions of deleterious and beneficial rhizosphere microorganisms and the effect of cropping practices. Annual Review of Phytopathology, 25: 339-358.
SECOR, G. A. and N. C. GUDMESTAD, 1999. Managing fungal diseases of potato. Canadian Journal of Plant Pathology, 21: 213-221.
SUSLOW, T. V., M. N. SCHROTH and M. ISAKA, 1982. Application of a rapid method for Gram-differentiation of plant pathogenic and saprophytic bacteria without staining. Phytopathology72: 917-918.
THORNLEY, M. J. 1960. The differentiation of Pseudomonasfrom other bacteria on the basis of arginine metabolism. Journal of Applied Bacteriology, 23: 37 52.
VOISARD, C., C. KEEL, D. HAAS and G. DÈFAGO, 1989. Cyanide production by Pseudomonas fluorescens helps suppress black root rot of tobacco under gnotobiotic conditions. The EMBO Journal, 8: 351.
WELLER, DM. 1988. Biological control of soilborne plant pathogens in the rhizosphere with bacteria. Annual Review of Phytopathology, 26: 379-407.
WINSTEAD, N. N. and A. KELMAN, 1952. Inoculation techniques for evaluating resistance to Pseudomonas solanacearum. Phytopathology, 42: 3946-3951.
XU, G. W. and D. C. GROSS, 1986. Field evaluations of the interactions among Pseudomonads fluorescent, Erwinia carotovora, and potato yields. Phytopathology, 76, 4: 423-430. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 835 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 744 |
||