| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 2,975 |
| تعداد مقالات | 33,408 |
| تعداد مشاهده مقاله | 43,904,316 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 20,405,835 |
ردیابی ژن بیوسنتز سیانید هیدروژن در سودوموناسهای فلورسنت بازدارنده رشد R. solani عامل پوسیدگی ریشه چغندرقند | ||
| چغندرقند | ||
| مقاله 4، دوره 31، شماره 1، خرداد 1394، صفحه 59-49 اصل مقاله (231.14 K) | ||
| نوع مقاله: کامل علمی - پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/jsb.2015.101438 | ||
| نویسندگان | ||
| مریم کنجدی1؛ جعفر وطن دوست* 2؛ علی اکبر جنت آبادی3 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی، واحد سبزوار | ||
| 2استادیار گروه زیست شناسی دانشگاه حکیم سبزواری | ||
| 3استادیار گروه دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی، واحد سبزوار | ||
| چکیده | ||
| برای ردیابی ژن سیانید هیدروژن و تعیین قابلیت سودوموناسهای فلورسنت در تولید سیانید هیدروژن و بازدارندگی از رشد بیمارگر Rhizoctonia solani عامل پوسیدگی ریشه و طوقه چغندرقند از ریزوسفر مزارع چغندرقند سبزوار نمونهبرداری شد. پس از جمعآوری نمونههای خاک و خالصسازی، 31 سویه سودوموناس جداسازی شده و در محیط اختصاصی سودوموناس آگارF، سودوموناسهای فلورسنت براساس آزمونهای میکروبی تفکیک و شناسایی شدند. نتایج PCR برای ردیابی ژن بیوسنتز سیانید هیدروژن نشان داد که سه سویه حاوی ژن بیوسنتز سیانید هیدروژن بودند. در بررسی کیفی تولید سیانید هیدروژن در محیط کشت میکروبی نیز مشخص شد که این سویهها توانایی تولید سیانید هیدروژن را به مقادیر مختلف دارند. جهت بررسی میزان بازدارندگی جدایههای سودوموناس فلورسنت از رشد قارچ R. solani، درصد کاهش رشد قارچ در حضور باکتری محاسبه گردید. از میان سه سویه سودوموناس فلوروسنت، نمونه C7 بیشترین میزان بازدارندگی از رشد قارچ و بیشترین مقدار تولید سیانید هیدروژن را داشت که بهعنوان کاندیدای مناسب بیوکنترل معرفی می شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پوسیدگی ریزوکتونیای ریشه و طوقه؛ چغندرقند؛ سودوموناس‌فلورسنت؛ کنترل بیولوژیک | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Detection of hydrogen cyanide biosynthetic gene in Pseudomonas fluorescent as a control agent of Rhizoctonia solani growth | ||
| نویسندگان [English] | ||
| M. Konjedi1؛ J. Vatandoost2؛ A Janatabadi3 | ||
| 1MSc Student, Dept. of Agricultural Biotechnology, Islamic Azad University, Iran | ||
| 2Assistant professor, Dept. of Biology, Hakim Sabzevari University, Iran. | ||
| 3Assistant professor, Dept. of Agriculture, Islamic Azad University, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| In order to detect hydrogen cyanide gene and to determine Pseudomonas fluorescent efficiency in producing hydrogen cyanide for controlling the growth of Rhizoctonia solanipathogen (the causal agent of sugar beet root and crown rot), samples were collected from sugar beet rhizosphere in Sabzevar fields. After soil sampling and purification, 31 Pseudomonas Spp. isolates were separated on specific Pseudomonas agar F medium, and Pseudomonas fluorescent strains were identified and isolated based on microbial tests. PCR results showed that three strains contained cyanide hydrogen biosynthetic gene. The qualitative evaluation of hydrogen cyanide production in microbial medium showed that all the strains were capable of producing different amounts of hydrogen cyanide. To determine the growth inhibition rate of Rhizoctonia solani by Pseudomonas fluorescent, the percentage of fungus growth in the presence of bacteria was calculated. Among the three Pseudomonas fluorescent strains, C7 showed the greatest inhibition rate and hydrogen cyanide production which can be recommended as a suitable candidate for the pathogen biocontrol. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| biocontrol, Pseudomonas fluorescence, Rhizoctonia root and crown rot, sugar beet | ||
|
سایر فایل های مرتبط با مقاله
|
||
| مراجع | ||
|
Adesina MF, Lembke A, Costa R, Speksnijder A, Smalla K. Screening of bacterial isolates from various European soils for antagonistic activity towards Rhizoctonia solani and Fusarium oxysporum:Site-dependent composition and diversity revealed. Soil Biology and Biochemistry. 2007; 39(11): 2818-2828.
Adhikari A, Dutta S, Nandi S, Bhattacharya I, De Roy M, Sarkar G, Mandal T. Antagonistic potentiality of native rhizobacterial isolates against root rot disease of okra, incited by Rhizoctonia solani. African Journal of Agricultural Research. 2013; 8(4): 405-412.
Ahmadinejad A, Okhovat M. Pathogenicity test of some soil-borne fungi on some important field crops. Journal of Plant Pathology. 1976; 12: 13-17.
Alström S, Burns R. Cyanide production by rhizobacteria as a possible mechanism of plant growth inhibition. Biology and Fertility of Soils. 1989; 7(3): 232-238.
Arcury T, Quandt S, Mellen B. An exploratory analysis of occupational skin disease among Latino migrant and seasonal farmworkers in North Carolina. Journal of Agricultural safety and Health. 2003; 9(3): 221-232.
Balali GR, Moharabi Z. Study of Intraspecific variation of anastomosis group AG-2 of Rhizoctonia solani isolated from lawn (Lolium perene L.) using pectic zymorgan marker. Iranian Journal of Biology. 2006; 19(3): 241-250 (In Persian)
Behbodi K, Sharifi A. The effects of pseudomonas fluorescent on fungus Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary, root rot of sunflower. Agricultural Sciences of Iran. 2006; 36(4): 791-803. (In Persian)
Ershad J. Fungi of Iran, Avin Publisher, Tehran, 1977; pp.52. (In Persian)
Gerhardson B. Biological substitutes for pesticides. Trends in Biotechnology. 2002; 20(8): 338-343.
Girard G, Barends S, Rigali S, Van Rij ET, Lugtenberg BJJ, Bloemberg GV. Pip, a novel activator of phenazine biosynthesis in Pseudomonas chlororaphis PCL1391. Journal of bacteriology. 2006; 188(23): 8283-8293.
Haas D, Défago G. Biological control of soil-borne pathogens by fluorescent pseudomonads. Nature Reviews Microbiology. 2005; 3(4): 307-319.
Habibi B. Some observations on the ecology of Phytophthora drechsleri, a fungus causing sugar beet root rot. Journal of Plant Pathology. 1975; 11: 88-98.(In Persian)
Habibi B. Rubenkopffaule und deren beziehung zu dem pilz Rhizopus arrhizus. Ent. Phyt. Appliq. 1977; 45: 56-64.
Hecker R, Ruppel E. Rhizoctonia root rot resistance in sugar beet: breeding and related research. J. Am. Soc. Sugar Beet Technol. 1977; 19(3): 246-256.
Holt JG, Krieg NR, Sneath PH, Staley JT, Williams ST. Bergey’s manual of determinative bacteriology, Williams and Wilkins Publisher, Baltimore, 1994; pp.78
Jayaprakashvel M, Mathivanan N. Management of Plant Diseases by Microbial Metabolites. Bacteria in Agrobiology: Plant Nutrient Management. 2011: 237-265.
Kapsalis A, Gravanis F, Gowen S. Involvement of phenazine-1-carboxylic acid, siderophores and hydrogen cyanide in suppression of Rhizoctonia solani and Pythium spp. damping-off by Pseudomonas oryzihabitans and Xenorhabdus nematophila. Journal of Food Agriculture and Environment. 2008; 6(1): 168.
Kidarsa TA, Shaffer BT, Goebel NC, Roberts DP, Buyer JS, Johnson A, Kobayashi DY, Zabriskie TM, Paulsen I, Loper JE. Genes expressed by the biological control bacterium Pseudomonas protegens Pf5 on seed surfaces under the control of the global regulators GacA and RpoS. Environmental Microbiology. 2013; 15(3): 716-735.
Kumar B, Dube H. Seed bacterization with a fluorescent Pseudomonas for enhanced plant growth, yield and disease control. Soil Biology and Biochemistry. 1992; 24(6): 539-542.
Pal KK, Gardener BM. Biological control of plant pathogens. The plant health instructor. 2006; 2: 1117-1142.
Parmeter Jr J, Whitney H. Taxonomy and nomenclature of the imperfect state Rhizoctonia solani, biology and pathology, University of California Press Publisher, Berkeley, 1970; pp.7-19.
Ramette A, Frapolli M, Défago G, Moënne-Loccoz Y. Phylogeny of HCN synthase-encoding hcnBC genes in biocontrol fluorescent pseudomonads and its relationship with host plant species and HCN synthesis ability. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2003; 16(6): 525-535.
Ramette A, Frapolli M, Saux MF-L, Gruffaz C, Meyer J-M, Défago G, Sutra L, Moënne-Loccoz Y. Pseudomonas protegens sp. nov., widespread plant-protecting bacteria producing the biocontrol compounds 2, 4-diacetylphloroglucinol and pyoluteorin. Systematic and applied microbiology. 2011; 34(3): 180-188.
Saharan B, Nehra V. Plant growth promoting rhizobacteria: a critical review. Life Science and Medical Research. 2011; 21: 1-30.
Sheikholeslam M, Younesi H, Safaee D. Characterization of the fungi involved in sugar beet root rot and their distribution in Kermanshah province. Journal of Sugar Beet. 2006; 21(1): 99-100. (In Persian, abstract in English)
Shivani B, Dubey R, Maheshwari D. Enhancement of plant growth and suppression of collar rot of sunflower caused by Sclerotium rolfsii through fluorescent Pseudomonas. Indian Phytopathol. 2005; 58(1): 17-24.
Suresh A, Pallavi P, Srinivas P, Kumar VP, Chandra SJ, Reddy SR. Plant growth promoting activities of fluorescent pseudomonads associated with some crop plants. African Journal of Microbiology Reserch. 2010; 4(14): 1491-1494.
Tian H, Riggs RD. Effects of rhizobacteria on soybean cyst nematode, Heterodera glycines. Journal of nematology. 2000; 32(4): 377.
Vilgalys R, Cubeta M. Molecular systematics and population biology of Rhizoctonia. Annual Review of Phytopathology. 1994; 32(1): 135-155.
Weller DM. Pseudomonas biocontrol agents of soilborne pathogens: looking back over 30 years. Phytopathology. 2007; 97(2): 250-256.
Whitney E, Duffos J. Compendium of Beet Diseases and Insects, American Phytopathological Society Press Publisher, PaulMinnesota, USA, 1991; pp.76 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,400 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,235 |
||
