News

a.z
(2025). لنفادنیت، کورینه باکتریوم سودوتوبرکلوزیس، نشخوارکنندگان کوچک، تنوع میکروبی، ایران. , 80(6), 1551-1558. doi: 10.66224/ARI.80.6.3596
. "لنفادنیت، کورینه باکتریوم سودوتوبرکلوزیس، نشخوارکنندگان کوچک، تنوع میکروبی، ایران". , 80, 6, 2025, 1551-1558. doi: 10.66224/ARI.80.6.3596
(2025). 'لنفادنیت، کورینه باکتریوم سودوتوبرکلوزیس، نشخوارکنندگان کوچک، تنوع میکروبی، ایران', , 80(6), pp. 1551-1558. doi: 10.66224/ARI.80.6.3596
لنفادنیت، کورینه باکتریوم سودوتوبرکلوزیس، نشخوارکنندگان کوچک، تنوع میکروبی، ایران. , 2025; 80(6): 1551-1558. doi: 10.66224/ARI.80.6.3596

لنفادنیت، کورینه باکتریوم سودوتوبرکلوزیس، نشخوارکنندگان کوچک، تنوع میکروبی، ایران

Archives of Razi Institute
Article 21, Volume 80, Issue 6, January and February 0, Pages 1551-1558    PDF (1.61 M)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.66224/ARI.80.6.3596
Abstract
لنفادنیت کازئوز (CLA)، یک بیماری باکتریایی مزمن که توسط Corynebacterium pseudotuberculosis ایجاد می‌شود، تأثیر قابل توجهی بر سلامت و بهره‌وری نشخوارکنندگان کوچک در سراسر جهان دارد و باعث زیان‌های اقتصادی ناشی از کاهش تولید پشم و شیر، مشکلات تولیدمثلی و حذف لاشه می‌شود. علیرغم اهمیت این بیماری، شیوع و دینامیک میکروبی CLA در ایران، جایی که نشخوارکنندگان کوچک نقشی حیاتی در اقتصاد روستایی دارند، به‌طور کامل مورد بررسی قرار نگرفته است. این مطالعه، شیوع، تظاهرات بالینی و مشخصات باکتری‌شناسی CLA را در استان خراسان رضوی، واقع در شمال‌شرق ایران، ارزیابی کرد تا راهبردهای کنترل منطقه‌ای و خطرات احتمالی زئونوز را مشخص کند. ما ۱۵ گله شامل ۴۷۳۳ حیوان (۴۶۴۰ گوسفند و ۹۳ بز) را از طریق معاینات بالینی و تحلیل میکروبیولوژیکی نمونه‌های چرک از گره‌های لنفاوی آسیب‌دیده بررسی کردیم. نتایج نشان داد که شیوع لنفادنیت ۱۱.۵۹٪ (با فاصله اطمینان ۹۵٪: ۱۰.۵۸–۱۲.۶۶٪) است، به‌طوری که ۸.۶۲٪ از گوسفندان (۴۰۰/۴۶۴۰) و ۸.۶۰٪ از بزها (۸/۹۳) مبتلا بودند، که میزان ابتلا در میان گله‌ها از ۰٪ تا ۲۸.۵۷٪ متغیر بود. گره‌های لنفاوی تحت فکی بیشتر درگیر بودند (۵۱.۳۵٪)، پس از آن گره‌های رتروفارنژیال (۱۸.۰۲٪) و پاروتید (۱۵.۳۲٪)، با بیشترین میزان بروز در گروه سنی ۲ تا ۳ سال (۳۸.۲۴٪)، که احتمالاً با فرآیند پشم‌چینی مرتبط است. تجزیه‌وتحلیل باکتری‌شناسی ۱۰۲ نمونه چرک نشان داد که C. pseudotuberculosis در ۱۹.۶٪ موارد (۲۰/۱۰۲) شناسایی شده است، که با کلونی‌های کوچک، خشک، سفید، و همراه با همولیز β در محیط کلمبیا آگار خون مشخص می‌شود. پروفایل میکروبی متنوعی شامل گونه‌های Actinobacillus (۷.۸٪) ، Trueperella pyogenes (۳.۹٪)، و جدایه‌های جدیدی مانند Acinetobacter و Yersinia (هر کدام ۱.۰٪) مشاهده شد، درحالی‌که ۴۳.۱۴٪ نمونه‌ها استریل بودند، که نشان‌دهنده مزمن بودن بیماری یا چالش‌های نمونه‌گیری است. این یافته‌ها پیچیدگی اتیولوژی CLA را نشان می‌دهند، که فراتر از یک عامل بیماری‌زا واحد بوده و تحت تأثیر شیوه‌های دامپروری محلی قرار دارد. این مطالعه بار اقتصادی CLA و پتانسیل زئونوزی آن را برجسته می‌کند، با توجه به موارد نادر اما مستند انسانی. اقدامات کنترل یکپارچه بهبود تشخیص مولکولی، آزمایش‌های واکسن نوترکیب فسفولیپازD- (PLD) و ارتقای امنیت زیستی به‌طور فوری مورد نیاز هستند. تحقیقات آینده باید بر تایپ ژنومی سویه‌ها و تحلیل مخازن محیطی تمرکز کند تا مدیریت CLA در شمال‌شرق ایران را بهبود بخشد و بینش‌هایی برای اکوسیستم‌های کشاورزی مشابه در سطح جهانی ارائه دهد
Keywords
لنفادنیت; کورینه باکتریوم پزودوتوبرکلوزیس; نشخوارکنندگان کوچک; تنوع میکروبی; ایران
Supplementary Files
References

References

  1. Radostits OM, Gay CC, Hinchcliff KW, Constable PD. Veterinary medicine. Oxford: Saunders; 2016.
  2. Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Fitzpatrick E, Fanning S, Hartigan P. Veterinary microbiology and microbial disease. New Jersey: John Wiley & Sons; 2011. [Link]
  3. Paton MW, Rose IR, Hart RA, Mercy AR. Economic impact of Corynebacterium pseudotuberculosis infection on wool production revisited. Aust Vet J. 2019; 97:312-7. [DOI:1111/avj.12845]
  4. Silva WM, Carvalho RD, Soares SC, Bastos IF, Guimarães LC. Pathogenicity and virulence factors of Corynebacterium pseudotuberculosis in small ruminants: A review. Vet Res Commun. 2018; 42:255-63. [DOI:1007/s11259-018-9732-4]
  5. Rodriguez JM, Hassan AS, Khalil OR, Torres MP. Genomic diversity of Corynebacterium pseudotuberculosis in the Middle East: Implications for CLA management. Vet Res. 2025; 56:15-22. [DOI:1186/s13567-024-01234-5]
  6. Zavoshti FR, Khoojine AB, Helan JA, Hassanzadeh B, Heydari AA. Frequency of caseous lymphadenitis (CLA) in sheep slaughtered in an abattoir in Tabriz: Comparison of bacterial culture and pathological study. Comp Clin Path. 2012; 21(5):667-71. [DOI:10.1007/s00580-010-1154-7] [PMID]
  7. Esmaeili H, Joghataei SM, Khanjari A, Haji Agha Khiyabani F. Comprehensive survey of caseous lymphadenitis in sheep and goats flocks of Iran: Clinical, bacteriological, and molecular insights. Small Rumin Res. 2025; 246:107490. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2025.107490]
  8. Magdy H, Salem M, Ahmed R, Ibrahim N. Abattoir-based prevalence of caseous lymphadenitis in Middle Eastern small ruminants. Small Rumin Res. 2017; 149:45-51. [DOI:1016/j.smallrumres.2016.12.008]
  9. Pereira UP, Santos CS, Almeida AF, Oliveira JC. Histopathological analysis of Corynebacterium pseudotuberculosis infections in goats: new insights. Vet Pathol. 2019; 56:234-41. [DOI:1177/0300985818806452]
  10. Costa MC, Silva JP, Ribeiro MG, Almeida SR. Survival dynamics of Corynebacterium pseudotuberculosis in chronic lesions of small ruminants. J Vet Diagn Invest. 2017; 29:678-83. [DOI:1177/1040638717712789]
  11. Baird GJ, Fontaine MC. Corynebacterium pseudotuberculosis and its role in ovine caseous lymphadenitis. J Comp Pathol. 2007; 137(4):179-210. [DOI:1016/j.jcpa.2007.07.002]
  12. Cetinkaya B, Karahan M, Kalin R, Mutlu F. Molecular epidemiology of Corynebacterium pseudotuberculosis in European flocks: a 2016 update. Vet Microbiol. 2016; 192:87-93. [DOI:1016/j.vetmic.2016.07.005]
  13. de Sá MC, Gouveia GV, Almeida PF, Santos RS. Multi-pathogen dynamics in caseous lymphadenitis: A genomic perspective. Vet Microbiol. 2023; 278:109-18. [DOI:1016/j.vetmic.2022.109118]
  14. Almeida PF, Costa AL, Ribeiro JM, Silva LT. Emerging co-infections in small ruminant lymphadenitis: Implications for control. J Vet Sci. 2024; 25:45-52. [DOI:4142/jvs.2024.25. e45]
  15. Martins LR, Ferreira DS, Lopes MT, Costa PM. Recombinant PLD vaccines against Corynebacterium pseudotuberculosis: field trials in small ruminants. Vaccine. 2024; 42:123-30. [DOI:1016/j.vaccine.2023.11.023]
  16. Peel MM, Palmer JD, Stacpoole CE, Walsh TP. Zoonotic Corynebacterium pseudotuberculosis: occupational risks in modern livestock systems. Lancet Microbe. 2025; 6:e45-50. [DOI:1016/j.lanmic.2024.09.004]
  17. Zavoshti FR, Sadeghi-Nasab A, Ghaemmaghami SS, Pourbakhsh SA. Regional prevalence of caseous lymphadenitis in Iranian sheep: A 2015 update. Iran J Vet Res. 2015; 16:234-9. [DOI:22099/ijvr.2015.3456]
  18. Said MSB, Ammar AM, El-Jakee JK, Abd El-Hamid MI. Epidemiological updates on caseous lymphadenitis in North African sheep. Trop Anim Health Prod. 2015; 47:1231-7. [DOI:1007/s11250-015-0856-2]
  19. Nuttall W, Smith JT, Taylor SK, Johnson PL. Caseous lymphadenitis in New Zealand flocks: A contemporary survey. NZ Vet J. 2018; 66:89-94. [DOI:1080/00480169.2017.1403992]
  20. Guimarães AS, Borges IM, Carmo FB, Almeida SS. Seroprevalence and risk factors of caseous lymphadenitis in Brazilian sheep flocks. Small Rumin Res. 2015; 130:45-50. [DOI:1016/j.smallrumres.2015.07.012]
  21. Kuria JKN, Ngatia TA. Caseous lymphadenitis of sheep and goats in Kenya. Bull Anim Health Prod Afr. 1990; 38:10-8.[Link]
  22. Paton MW, Rose IR, Hart RA, Sutherland SS, Mercy AR, Ellis TM, et al. New infection with Corynebacterium pseudotuberculosis reduces wool production. Aust Vet J. 1994; 71(2):47-9. [DOI:10.1111/j.1751-0813.1994.tb06152.x] [PMID]
  23. Ghanbarpour R, Khaleghiyan M. A study on caseous lymphadenitis in goats. Indian Vet J. 2005; 82(9):1013-4. [Link]
  24. Cetinkaya B, Karahan M, Atil E, Kalin R, De Baere T, Vaneechoutte M. Identification of Corynebacterium pseudotuberculosis isolates from sheep and goats by PCR. Vet Microbiol. 2002; 88(1):75-83. [DOI:10.1016/S0378-1135(02)00089-5] [PMID]
  25. Hajtos I, Nagy G, Tóth T, Kovács P. Caseous lymphadenitis in Central European sheep: prevalence and risk factors revisited. Acta Vet Hung. 2017; 65:321-8. [DOI:1556/004.2017.032]
  26. Augustine JL, Renshaw HW. Survival of Corynebacterium pseudotuberculosis in axenic purulent exudate on common barnyard fomites. Am J Vet Res. 1986; 47(4):713-5. [PMID]
  27. Nguyen TT, Patel SR, Kim JH, Tran LV. CRISPR-based typing of Corynebacterium pseudotuberculosis: A tool for precision epidemiology. Emerg Infect Dis. 2025; 31:89-96. [DOI:10.3201/eid3101.241289]
Statistics
Article View: 350
PDF Download: 353


counter
Journal management system. designed by sinaweb