اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات282
تعداد نشریات سازمان80
تعداد شماره‌ها3,262
تعداد مقالات36,058
تعداد مشاهده مقاله55,182,267
تعداد دریافت فایل اصل مقاله94,182,542
علیزاده, مهرداد, زمانی, سیده معصومه, علیزاده علی آبادی, علی, صفایی, ناصر. (1404). اولین گزارش از ردیابی فیتوپلاسما در تاغزارهای استان‌های قم و تهران. سامانه مدیریت نشریات علمی, 23(1), 179-188. doi: 10.22092/ijfrpr.2025.367919.1654
مهرداد علیزاده; سیده معصومه زمانی; علی علیزاده علی آبادی; ناصر صفایی. "اولین گزارش از ردیابی فیتوپلاسما در تاغزارهای استان‌های قم و تهران". سامانه مدیریت نشریات علمی, 23, 1, 1404, 179-188. doi: 10.22092/ijfrpr.2025.367919.1654
علیزاده, مهرداد, زمانی, سیده معصومه, علیزاده علی آبادی, علی, صفایی, ناصر. (1404). 'اولین گزارش از ردیابی فیتوپلاسما در تاغزارهای استان‌های قم و تهران', سامانه مدیریت نشریات علمی, 23(1), pp. 179-188. doi: 10.22092/ijfrpr.2025.367919.1654
علیزاده, مهرداد, زمانی, سیده معصومه, علیزاده علی آبادی, علی, صفایی, ناصر. اولین گزارش از ردیابی فیتوپلاسما در تاغزارهای استان‌های قم و تهران. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1404; 23(1): 179-188. doi: 10.22092/ijfrpr.2025.367919.1654

اولین گزارش از ردیابی فیتوپلاسما در تاغزارهای استان‌های قم و تهران

تحقیقات حمایت و حفاظت جنگلها و مراتع ایران
مقاله 11، دوره 23، شماره 1 - شماره پیاپی 45، فروردین 1404، صفحه 179-188    اصل مقاله (403.59 K)
نوع مقاله: مقاله کوتاه
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijfrpr.2025.367919.1654
نویسندگان
مهرداد علیزاده1؛ سیده معصومه زمانی* 2؛ علی علیزاده علی آبادی3؛ ناصر صفایی4
1دانش‌آموخته دکتری، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
2استادیار پژوهش، موسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران.
3دانشیار پژوهش، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
4دانشیار، گروه گیاهپزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران.
چکیده
سابقه و هدف: فیتوپلاسماها، باکتری‌های کوچک و بدون دیواره سلولی هستند که به‌عنوان انگل‌های اجباری در بافت‌های آبکش گیاهان زندگی می‌کنند و می‌توانند موجب بروز بیماری‌های مهمی در گیاهان شوند. این باکتری‌ها به‌دلیل فقدان دیواره سلولی، قادر به نفوذ به سلول‌های گیاهی هستند و از مواد مغذی گیاهان استفاده می‌کنند. فیتوپلاسماها به‌عنوان بیمارگر‌های گیاهی شناخته می‌شوند و می‌توانند به‌طور مستقیم بر فرایندهای متابولیکی گیاه تأثیر بگذارند. علائم ناشی از آلودگی فیتوپلاسما شامل زردی برگ‌ها، کوتولگی، تغییر شکل گل‌ها به ساختارهای برگی (فیلودی) و کاهش باردهی گیاهان می‌باشد. این علائم نه‌تنها بر سلامت گیاه تأثیر می‌گذارد، بلکه می‌تواند به کاهش تولید محصولات کشاورزی و خسارتهای اقتصادی قابل‌توجهی منجر شود. با توجه به اهمیت کشاورزی در تأمین امنیت غذایی و معیشت کشاورزان، شناخت و مدیریت بیماری‌های ناشی از فیتوپلاسماها ضروریست.
مواد و روش‌ها: در این تحقیق، نمونه‌برداری از درختان تاغ که دارای علائم بوته جارویی هستند، در مناطقی از استان‌های قم و تهران انجام شد تا بررسی دقیقی از وجود فیتوپلاسما در این گیاهان انجام شود. برای این منظور، از روش استخراج دی‌ان‌ای کل استفاده شد که شامل جداسازی و خالص‌سازی دی‌ان‌ای از بافت‌های گیاهی بود. این فرایند نیازمند دقت بالا و رعایت شرایط خاص برای جلوگیری از آلودگی نمونه‌هاست. پس از استخراج دی‌ان‌ای، از روش پی‌سی‌آر آشیانه (Nested-PCR) برای شناسایی و تأیید حضور فیتوپلاسما در نمونه‌ها استفاده گردید.
نتایج و یافته‌ها:  نتایج تحقیقات نشان داد، فیتوپلاسما در برخی مناطق استان‌های قم و تهران به‌طور گسترده وجود دارد و این موضوع می‌تواند خطری جدی برای تاغزارهای این استان‌ها محسوب شود. این یافته‌ به‌ویژه از آن جهت حائز اهمیت است که اولین گزارش از بروز بیماری فیتوپلاسمایی روی درختان تاغ در ایران و حتی در سطح جهانی به‌شمار می‌رود. تاغزارها، به‌عنوان اکوسیستم‌های مهم بیابانی، نقش حیاتی در حفظ خاک و جلوگیری از فرسایش آن دارند و شیوع فیتوپلاسما می‌تواند به تخریب این زیستگاه‌ها منجر شود. همچنین، نتایج نشان‌دهنده نیاز فوری به اقدامات کنترلی برای جلوگیری از گسترش این بیماری هستند، زیرا تاغزارها نه‌تنها برای محیط‌زیست بلکه برای معیشت جوامع محلی نیز اهمیت دارند.
نتیجه‌گیری: ضرورت انجام مطالعات بیشتر و اتخاذ تمهیدات لازم برای مدیریت و کنترل بیماری فیتوپلاسمایی در تاغزارها به‌وضوح احساس می‌شود. با توجه به گسترش این بیماری در مناطق مختلف، شناسایی ناقل‌های بیماری و روش‌های انتقال آنها از اهمیت ویژه‌ای برخوردار است. این شناسایی می‌تواند به محققان و کارشناسان کمک کند تا راهبرد‌های مؤثری برای کنترل و پیشگیری از شیوع بیماری طراحی کنند. بنابراین، نیاز به یک رویکرد جامع و چندجانبه برای مدیریت این بیماری وجود دارد که شامل تحقیقات علمی، همکاری بین‌بخشی و مشارکت جامعه محلی باشد تا به حفظ سلامت تاغزارها و اکوسیستم‌های مرتبط کمک شود. همچنین، آموزش کشاورزان درباره علائم بیماری و روش‌های پیشگیری نیز باید جزء برنامه‌های مدیریتی قرار گیرد تا بتوان خسارتهای ناشی از فیتوپلاسما را کاهش داد.
کلیدواژه‌ها
فیتوپلاسما؛ تاغ؛ قم؛ تهران؛ ردیابی
عنوان مقاله [English]
The first report of phytoplasma detection in Haloxylon-planted areas of Qom and Tehran provinces
نویسندگان [English]
Mehrdad Alizadeh1؛ Seyedeh Masoomeh Zamani2؛ Ali Alizadeh Aliabadi3؛ Naser Safaie4
1PhD, Research Institute of Forests and Rangelands, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, Iran.
2Assistant Prof., Research Institute of Forests and Rangeland, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, Iran
3Associate Pro., Research Institute of Forests and Rangeland, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, Iran
4Associate Prof., Department of Plant Pathology, Tarbiat Modares University, Tehran, Iran
چکیده [English]
Background and Objective: Phytoplasmas are small, cell wall–less bacteria that live as obligate parasites in the phloem tissues of plants and can cause significant diseases. Due to the absence of a cell wall, these bacteria are capable of penetrating plant cells and utilizing plant nutrients. Phytoplasmas are recognized as plant pathogens and can directly affect plant metabolic processes. Symptoms caused by phytoplasma infection include leaf yellowing, dwarfism, conversion of flowers into leaf-like structures (phyllodes), and reduced plant productivity. These symptoms not only compromise plant health but may also lead to decreased agricultural output and considerable economic losses. Given the critical importance of agriculture for food security and the livelihoods of farmers, understanding and managing diseases caused by phytoplasmas is essential.
Methodology: In this study, Haloxylon ammodendron shrubs showing symptoms of witch’s broom were sampled in Qom and Tehran provinces to conduct a detailed investigation of phytoplasma presence in these plants. Total DNA extraction was performed, involving the isolation and purification of DNA from plant tissues. This procedure required high precision and strict adherence to specific conditions to prevent sample contamination. Following DNA extraction, Nested-PCR was employed to identify and confirm the presence of phytoplasma in the samples. This method enables accurate detection and allows further analysis of phytoplasma genetic diversity. Additionally, modern molecular techniques, including genome sequencing, may provide deeper insights into the biological and pathogenic characteristics of phytoplasmas.
Results: The findings revealed that phytoplasma is widespread in certain areas of Qom and Tehran provinces, posing a significant threat to Haloxylon-planted regions in these areas. This report is particularly noteworthy as it represents the first confirmed occurrence of phytoplasma infection in H. ammodendron shrubs in Iran and worldwide. Desert ecosystems, such as Haloxylon shrublands, play a crucial role in soil preservation and erosion prevention, and the spread of phytoplasma could lead to the degradation of these habitats. Furthermore, the results highlight the urgent need for effective control measures to prevent the disease from spreading, as these shrublands are critical not only for the environment but also for the livelihoods of local communities.
Conclusion: There is a clear necessity for further research and the implementation of appropriate management strategies to control and prevent phytoplasma disease in Haloxylon shrublands. Considering the disease’s occurrence in multiple regions, identifying vectors and transmission pathways is of particular importance. This knowledge can assist researchers and practitioners in designing effective control and prevention strategies. Therefore, a comprehensive and multifaceted approach is required for managing this disease, involving scientific research, interdisciplinary collaboration, and active participation of local communities to preserve the health of Haloxylon ecosystems. In addition, educating farmers about disease symptoms and preventive measures should be an integral component of management programs aimed at minimizing the damage caused by phytoplasma.
کلیدواژه‌ها [English]
Phytoplasma, Haloxylon ammodendron, Qom, Tehran, detection
مراجع
  • Alfaro-Fernandez, A., Abad-Campos, P., Hernandez-Llopis, D., Serrano-Fernandez, A. and Font-San-Ambrosio, M.I., 2011. Detection of stolbur phytoplasma in willow in Spain. Bulletin of insectology, 64(Supplement). S111-S112.
  • Babaei, G., Esmaeilzadeh-Hosseini, S.A., Zandian, M. and Bertaccini, A., 2020. Occurrence and identification of a phytoplasma associated with Pinus brutia witches’ broom disease in Isfahan, Iran. Australasian Plant Pathology, 49(6): 655-660.
  • Bertaccini, A., 2022. Plants and Phytoplasmas: When Bacteria Modify Plants. Plants, 11(11): 1425.
  • Bertaccini, A., Lee, I.M., Rao, G.P., Bertaccini, A., Fiore, N. and Liefting, L., 2018. Phytoplasmas: An Update In: Phytoplasmas: Plant Pathogenic Bacteria–I. Characterization and Epidemiology of Phytoplasma-Associated Diseases. Chapter 1: 1-29.
  • Bricker, J.S. and Stutz, J.C., 2004. Phytoplasmas associated with ash decline. Arboriculture & Urban Forestry (AUF), 30(3): 193-199.
  • Che, H.Y., Luo, D.Q., Fu, R.Y., Ye, S.B. and Wu, Y.F., 2009. Sequence analysis of 16S ribosomal DNA of phytoplasma associated with periwinkle yellows disease in Hainan. Acta Phytopathologica Sinica, 39: 212–216.
  • Contaldo, N., Bertaccini, A., Paltrinieri, S., Windsor, H.M. and Windsor, D.G., 2012. Axenic culture of plant pathogenic phytoplasmas. Phytopathologia Mediterranea, 51: 607–617.
  • Contaldo, N., D’Amico, G., Paltrinieri, S., Diallo, H.A., Bertaccini, A. and Rosete, Y.A., 2019. Molecular and biological characterization of phytoplasmas from coconut palms affected by the lethal yellowing disease in Africa. Microbiological research, 223: 51-57.
  • Contaldo, N., Satta, E., Zambon, Y., Paltrinieri, S. and Bertaccini, A., 2016. Development and evaluation of different complex media for phytoplasma isolation and growth. Journal of Microbiological Methods, 127: 105-110.
  • Dong, W., Xu, C., Li, D., Jin, X., Li, R., Lu, Q. and Suo, Z., 2016. Comparative analysis of the complete chloroplast genome sequences in psammophytic Haloxylon species (Amaranthaceae). PeerJ, 4: e2699.
  • Farzaneh, H., Ali Ahmad Karuri, S., Jalili, A., Matinizadeh, M. and Teymouri, M., 2007. Study of the symbiosis of mycorrhizal fungi with hawthorn (Haloxylon sp.) in the man-planted forests of Sabzevar. Journal of Research and Construction, 20(2): 113-121.
  • Gholami, J., Bahar, M. and Talebi, M., 2020. Simultaneous detection and direct identification of phytoplasmas in the aster yellows (16SrI), clover proliferation (16SrVI) and stolbur (16SrXII) groups using a multiplex nested PCR assay in potato plants. Potato Research, 63: 403-415.
  • Harrison, N.A., Boa, E. and Carpio, M.L., 2003. Characterization of phytoplasmas detected in Chinaberry trees with symptoms of leaf yellowing and decline in Bolivia. Plant Pathology, 52(2): 147-157.
  • Kiss, T., Šafářová, D., Navrátil, M. and Nečas, T., 2024. Molecular Characterization of ‘Candidatus Phytoplasma prunorum’in the Czech Republic and Susceptibility of Apricot Rootstocks to the Two Most Abundant Haplotypes. Microorganisms, 12(2): 399.
  • Kumari, S., Nagendran, K., Rai, A.B., Singh, B., Rao, G.P. and Bertaccini, A., 2019. Global status of phytoplasma diseases in vegetable crops. Frontiers in Microbiology, 10: 1349.
  • Laimer da Câmara Machado, M., Paltrinieri, S., Hanzer, V., Arthofer, W., Strommer, S., Martini, M., Pondrelli, M. and Bertaccini, A., 2001. Presence of European stone fruit yellows (ESFY or 16SrX‐B) phytoplasmas in apricots in Austria. Plant pathology, 50(1): 130-135.
  • Lee, G.W. and Han, S.S., 2023. Molecular detection of phytoplasmas of the 16SrI and 16SrXXXII groups in Elaeocarpus sylvestris trees with decline disease in Jeju Island, South Korea. The Plant Pathology Journal, 39(1): 149.
  • Lee, I.M., Davis, R.E. and Gundersen-Rindal, D.E., 2000. Phytoplasma: phytopathogenic Annual Reviews in Microbiology, 54(1): 221-255.
  • Marcone, C., 2015. Current status of phytoplasma diseases of forest and landscape trees and shrubs. Journal of Plant Pathology, 9-36.
  • Porebski, S., Bailey, L.G. and Baum, B.R., 1997. Modification of a CTAB DNA extraction protocol for plants containing high polysaccharide and polyphenol components. Plant molecular biology reporter, 15: 8-15.
  • Silva-Castaño, A.F., Brochero, H. and Franco-Lara, L., 2024. Insects as potential vectors of phytoplasmas in urban trees in a mega-city: a case study in Bogotá, Colombia. Urban Ecosystems, 1-17.
  • Trivellone, V., Cao, Y., and Dietrich, Ch. H. 2022. Comparison of traditional and next-generation approaches for uncovering phytoplasma diversity, with discovery of new groups, subgroups and potential vectors. Biology, 11(7): 977; https://doi.org/10.3390/biology11070977.
  • Wang, X.Y., Zhang, R.Y., Li, J., Li, Y.H., Shan, H.L., Li, W.F. and Huang, Y.K., 2022. The diversity, distribution and status of phytoplasma diseases in China. Frontiers in Sustainable Food Systems, 6: 943080.
  • Zhao, Y., Wei, W., Lee, I.-M., Shao, J., Suo, X. and Davis, R. E., 2009. Construction of an interactive online phytoplasma classification tool, iPhyClassifier, and its application in analysis of the peach X-disease
    phytoplasma group (16SrIII). International Journal of Systematic and Evolutionary, 59: 2582-2593.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 443
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 290


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب