News

a.z
(2025). شناسایی مولکولی و تعیین ژنوتیپ Blastocystis sp. در کودکان با علائم بالینی در جنوب شرق ایران با استفاده از روش PCR-sequencing. , 80(1), 61-67. doi: 10.32592/ARI.2025.80.1.61
. "شناسایی مولکولی و تعیین ژنوتیپ Blastocystis sp. در کودکان با علائم بالینی در جنوب شرق ایران با استفاده از روش PCR-sequencing". , 80, 1, 2025, 61-67. doi: 10.32592/ARI.2025.80.1.61
(2025). 'شناسایی مولکولی و تعیین ژنوتیپ Blastocystis sp. در کودکان با علائم بالینی در جنوب شرق ایران با استفاده از روش PCR-sequencing', , 80(1), pp. 61-67. doi: 10.32592/ARI.2025.80.1.61
شناسایی مولکولی و تعیین ژنوتیپ Blastocystis sp. در کودکان با علائم بالینی در جنوب شرق ایران با استفاده از روش PCR-sequencing. , 2025; 80(1): 61-67. doi: 10.32592/ARI.2025.80.1.61

شناسایی مولکولی و تعیین ژنوتیپ Blastocystis sp. در کودکان با علائم بالینی در جنوب شرق ایران با استفاده از روش PCR-sequencing

Archives of Razi Institute
Article 7, Volume 80, Issue 1, January and February 0, Pages 61-67    PDF (387.23 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.32592/ARI.2025.80.1.61
Abstract
هدف: Blastocystis sp یک انگل بی هوازی مشترک بین انسان و دام در روده بزرگ انسان و بسیاری از مهره داران است. بیشتر در افرادی که با حیوانات در تماس هستند دیده می شود. مطالعه حاضر با هدف شناسایی شیوع Blastocystis sp. و ژنوتیپ های رایج آن در کودکان با علائم بالینی اسهال در شهر زاهدان، جنوب شرق ایران. انجام شد
مواد و روش ها: یک مطالعه توصیفی مقطعی بر روی 60 کودک زیر ده سال با علائم گوارشی به ویژه اسهال انجام شد. پس از جمع آوری نمونه، نمونه های مدفوع برای تشخیص اولیه تحت آزمایش مستقیم مدفوع قرار گرفتند. پس از تشخیص میکروسکوپی، استخراج DNA و آزمایش PCR با هدف ژن RNA زیر واحد کوچک ریبوزومی [SSU rRNA] انجام شد و محصولات PCR خالص و توالی یابی شدند. توالی‌های نوکلئوتیدی با استفاده از نرم‌افزار بیوتکنولوژی کروماس نسخه 2.4 و نرم‌افزار CLC Genomic Work bench 11 مورد بازبینی قرار گرفتند. ژنوتیپ توالی ها با استفاده از نرم افزار CLC Genomic Work bench 11 و ترسیم درخت فیلوژنتیک با استفاده از نرم افزار MEGA7 با روش آماری Neighbor-Joining با استفاده از روش 2 پارامتری کیمورا انجام شد.
یافته‌ها: از 60 مورد بررسی شده، 5 کودک [8.33 درصد] با آزمایش‌های میکروسکوپی مستقیم و PCR مثبت بودند که در آن قطعه 500 [479] جفت باز در هدف SSU-rRNA تشخیص داده شد. تجزیه و تحلیل ژنتیکی 4 زیرگروه شامل زیرگروه های 1، 2، 3 و 5 را شناسایی کرد. درصد همسانی نوکلئوتیدی با توالی های موجود در بانک ژن بین 93 تا 100 درصد بود.
نتیجه‌گیری: با توجه به وجود زیرگروه‌های 3 و 5 در مطالعه و شواهد زئونوز آنها، بررسی دینامیک انگل و اصول اپیدمیولوژیک می‌تواند در راهبرد کنترل مؤثر باشد.
Keywords
Blastocystis spp; کودکان; توالی یابی PCR; جنوب شرق ایران
Supplementary Files
References
  1. Markell & Voge's Medical Parasitology - 10th SEA ed - 10th Edition. Print Book & E-Book. ISBN 9789814865012, 9789814865029.
  2. Javaherizadeh H, Khademvatan S, Soltani S, Torabizadeh M, Yousefi E. Distribution of haematological indices among subjects with Blastocystis hominis infection compared to controls. Przeglad gastroenterologiczny. 2014;9(1):38.
  3. Souppart L, Sanciu G, Cian A, Wawrzyniak I, Delbac F, Capron M, et al. Molecular epidemiology of human Blastocystis isolates in France. Parasitology research. 2009;105(2):413
  4. Zhang X, Qiao J, Zhou X, Yao F, Wei Z. Morphology and reproductive mode of Blastocystis hominis in diarrhea and in vitro. Parasitology research. 2007;101(1):43-51
  5. Rivera WL. Phylogenetic analysis of Blastocystis isolates from animal and human hosts in the Philippines. Veterinary parasitology. 2008;156(3-4):178-82.
  6. R. Stensvold, C.G. Clark, Current status of Blastocystis: a personal view, Parasitol.
  7. 65 (2016) 763–771.
  8. Lee I, Tan T, Tan P, Nanthiney D, Biraj M, Surendra K, et al. Predominance of Blastocystis subtype 4 in rural communities, Nepal. Parasitology research. 2012;110(4):1553-62.
  9. Jafari R, Sharifi F, Bagherpour B, Safari M. Prevalence of intestinal parasites in Isfahan city, central Iran, 2014. Journal of Parasitic Diseases. 2016;40(3):679-82.
  10. Khademvatan S, Masjedizadeh R, Rahim F, Mahbodfar H, Salehi R, Yousefi-Razin E, et al. Blastocystis and irritable bowel syndrome: Frequency and subtypes from Iranian patients. Parasitology international. 2017;66(2):142-5.
  11. Alfellani MA, Stensvold CR, Vidal-Lapiedra A, Onuoha ESU, Fagbenro-Beyioku AF, Clark CG. Variable geographic distribution of Blastocystis subtypes and its potential implications.Acta Trop. 2013;126:11–18.
  12. Ramírez JD et al. Geographic distribution of human blastocystis subtypes in South America Infection. Genet Evol. 2016;41:32–35.
  13. Stensvold CR, Alfellani M, Clark CG. Levels of genetic diversity vary dramatically between Blastocystis subtypes infection.Genet Evol. 2012;12:263–273.
  14. Elwakil HS, Hewedi IH. Pathogenic potential of Blastocystis hominis in laboratory mice. Parasitology research. 2010;107(3):685-9.
  15. Dogruman-Al F, Simsek Z, Boorom K, Ekici E, Sahin M, Tuncer C, et al. Comparison of methods for detection of Blastocystis infection in routinely submitted stool samples, and also in IBS/IBD Patients in Ankara, Turkey. PloS one. 2010;5(11): 15484
  16. Saleh Khoshnood, Abdollah Rafiei,, Jasem Saki, and Kobra Alizadeh. Prevalence and Genotype Characterization of Blastocystis hominis Among the Baghmalek People in Southwestern Iran in 2013 – 2014. undishapur J Microbiol. 2015; 8(10): e23930.
  17. Martin Kolisko, Olga Flegontova, Anna Karnkowska, Gordon Lax, Julia M Maritz, Tomáš Pánek, Petr Táborský, Jane M Carlton, Ivan Čepička, Aleš Horák, Julius Lukeš, Alastair G B Simpson, and Vera Tai. EukRef-excavates: seven curated SSU ribosomal RNA gene databases. Database (Oxford). 2020.
  18. hundi Wang, Tengteng Zhang, Yurui Wang, Laura A. Katz, Feng Gao and Weibo Song. Disentangling sources of variation in SSU rDNA sequences from single cell analyses of ciliates: impact of copy number variation and experimental error. Proc. R. Soc. B 284: 20170425.
  19. Mehlhorn H, Tan KSW, Yoshikawa H. Blastocystis: pathogen or Passenger? ringer Berlin Heidelberg. 2012. 225 p.
  20. Sarinee J, Porntip P, Kookwan S, Somchai P, Arunnee S, Chotechana W, Wachanan W, Hisao Y. Subtype identification of Blastocystis isolated from patients in a major ho spp.ital in northeastern Thailand. Parasitology Research. 2013;112:1781–1786.
  21. Souppart L, Moussa H, Cian A, Sanciu G, Poirier P, Alaoui HE, Delbac F, Boorom K, Delhaes L, Dei-Cas E. Subtype analysis of Blastocystis isolates from symptomatic patients in Egypt. Parasitology Research. 2010;106:505–511.
  22. Lei Deng, Yijun Chai, Ziyao Zhou, Haifeng Liu, Zhijun Zhong, Yanchun Hu, Hualin Fu,Chanjuan Yue, and Guangneng Peng. Epidemiology of Blastocystis infection in China: a systematic review. Parasite. 2019;26:41.
  23. Basak S, Rajurkar MN, Mallick SK. Detection of Blastocystis hominis: a controversial human pathogen. Parasitol Res. 2014;113(1):261–5.
  24. Dagci H, Kurt O, Demirel M, Ostan I, Azizi NR, Mandiracioglu A, et al. The prevalence of intestinal parasites in the province of Izmir, Turkey. Parasitol Res. 2008;103(4):839–45.
  25. Scanlan PD. Blastocystis: past pitfalls and future per spp.ectives. Trends Parasitol. 2012;28(8):327–34.
  26. Ebrahim Badparva, Behrouz Ezatpour, Hossein Mahmoudvand, Masoud Behzadifar, Meysam Behzadifar, and Farnaz Kheirandish. Prevalence and Genotype Analysis of Blastocystis hominis in Iran: A Systematic Review and Meta-Analysis. Arch Clin Infect Dis. 2017;12(1):36648.
  27. Ivan Wawrzyniak, Philippe Poirier, Eric Viscogliosi, Meloni Dionigia, Catherine Texier, Fre´de´ric Delbac and Hicham El Alaoui. Blastocystis, an unrecognized parasite: an overview of pathogenesis and diagnosis. Ther Adv Infect Dis. 2013;1(5):167178.
  28. Moosavi A, Haghighi A, Mojarad EN, Zayeri F, Alebouyeh M, Khazan H, Kazemi B, Zali MR. Genetic variability of Blastocystis isolated from symptomatic and asymptomatic individuals in Iran. Parasitology Research. 2012;111:2311–2315.
  29. Stensvold CR, Alfellani MA, Nørskov-Lauritsen S, Prip K, Victory EL, Maddox C, Nielsen HV, Clark CG. Subtype distribution of Blastocystis isolates from synanthropic and zoo animals and identification of a new subtype. International Journal for Parasitology. 2009;39:473–479.
  30. Giti Shirvani, Majid Fasihi‑Harandi, Omid Raiesi, Nasrin Bazargan and et al. Prevalence and Molecular Subtyping of Blastocystis from Patients with Irritable Bowel Syndrome, Inflammatory Bowel Disease and Chronic Urticaria in Iran. Acta Parasitologica. 2019;10:24.
  31. Noel C, Dufernez F, Gerbod D, Edgcomb VP, Delgado-Viscogliosi P, Ho LC, et al. Molecular phylogenies of Blastocystis isolates from different hosts: implications for genetic diversity, identification of species, and zoonosis. J Clin Microbiol. 2005;43(1):348–55.
  32. Rajah Salim H, Suresh Kumar G, Vellayan S, Mak JW, Khairul Anuar A, Init I, et al. Blastocystis in animal handlers. Parasitol Res.1999;85(12):1032–3.
  33. Forsell J, Granlund M, Stensvold CR, Clark CG, Evengard B. Subtype analysis of Blastocystis isolates in Swedish patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2012;31(7):1689–96.
  34. Abdel-Hameed DM, Hassanin OM. Proteaese activity of Blastocystis hominis subtype3 in symptomatic and asymptomatic patients. Parasitol Res. 2011;109(2):321–7.
  35. Tan TC, Ong SC, Suresh KG. Genetic variability of Blastocystis isolates obtained from cancer and HIV/AIDS patients. Parasitol Res. 2009;105(5):1283–6.
  36. Ali Haghighi, Alireza Salimi Khorashad, Ehsan Nazemalhosseini Mojarad, Bahram Kazemi and etal. Frequency of enteric protozoan parasites among patients with gastrointestinal complaints in medical centers of Zahedan, Iran. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2009;103(5):452-4
  37. Anahita Razavi Piranshahi, Mehdi Tavalla, Shahram Khademvatan. Genomic analysis of Blastocystis hominis isolates in patients with HIV-positive using locus SSU-rDNA. J Parasit Dis. 2018;42(1):28–33.
Statistics
Article View: 925
PDF Download: 692


counter
Journal management system. designed by sinaweb