News

a.z
(2025). بررسی مولکولی و زیست سنجی آلودگی نیوسپورا کانینوم در جنین های سقط شده گاوی در استان خراسان رضوی، ایران. , 80(3), 743-748. doi: 10.32592/ARI.2025.80.3.743
. "بررسی مولکولی و زیست سنجی آلودگی نیوسپورا کانینوم در جنین های سقط شده گاوی در استان خراسان رضوی، ایران". , 80, 3, 2025, 743-748. doi: 10.32592/ARI.2025.80.3.743
(2025). 'بررسی مولکولی و زیست سنجی آلودگی نیوسپورا کانینوم در جنین های سقط شده گاوی در استان خراسان رضوی، ایران', , 80(3), pp. 743-748. doi: 10.32592/ARI.2025.80.3.743
بررسی مولکولی و زیست سنجی آلودگی نیوسپورا کانینوم در جنین های سقط شده گاوی در استان خراسان رضوی، ایران. , 2025; 80(3): 743-748. doi: 10.32592/ARI.2025.80.3.743

بررسی مولکولی و زیست سنجی آلودگی نیوسپورا کانینوم در جنین های سقط شده گاوی در استان خراسان رضوی، ایران

Archives of Razi Institute
Article 24, Volume 80, Issue 3, January and February 0, Pages 743-748    PDF (472.85 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.32592/ARI.2025.80.3.743
Abstract
نیوسپورا کانینوم نقش بسزایی در ایجاد سقط جنین و نارسایی تولید مثل در گاوهای شیری دارد. اکثر سقط های مربوط به نئوسپوروزیس در طی 5 تا 6 ماه بارداری اتفاق می افتد. مرگ جنین در رحم، مومیایی شدن، اتولیز، مرده‌زایی، تولد با علائم بالینی یا تولد از نظر بالینی سالم اما با عفونت مزمن، همگی پیامدهای احتمالی این آلودگی هستند. هدف از این مطالعه تعیین آلودگی نیئوسپورا در جنین‌های گاو سقط‌شده از طریق آنالیز مولکولی و تست زیست‌سنجی موش بود. از سال 2019 تا 2022، تعداد 121 جنین سقط شده گاوی از گاوداری های استان خراسان رضوی جمع آوری شد. نمونه های مغز جنین برای یافتن DNA انگل با روش واکنش زنجیره ای پلیمراز غربالگری شدند. علاوه بر این، بخشی از بافت مغزی جنین ها یی که در آزمایش واکنش زنجیره ای پلیمرازمثبت شده بودند، پس از طی مراحل همگن سازی به روش داخل صفاق به پنج موش BALB/c تلقیح شدند. در پایان تجربه ، همه موش‌ها شش هفته پس از آلودگی به روش انسانی کشته شده و نمونه های خونی و بافتی آنها با روش‌های سرولوژی، میکروسکوپی واکنش زنجیره ای پلیمراز مورد بررسی قرار گرفتند. چنانچه نمونه‌های مغز موش‌ها با آزمایش واکنش زنجیره ای پلیمراز واکنش مثبت نشان می دادند، آزمایش زیست‌سنجی موش جهت جدا سازی بهتر دو باره تکرار گردید. در این بررسی در 19.8 درصد نمونه های مغز در جنین های سقط شده گاوDNA نیوسپورا شناسایی شد. از بین نمونه‌های مغزی PCRمثبت ، تنها 10 نمونه برای بررسی زیست‌سنجی در موش ها مناسب بودند. همه موش‌های تلقیح‌شده پس از سه بار آزمایش زیست سنجی فاقد علائم بالینی بوده و در آزمایش سرولوژی نیز نتیجه منفی نشان دادند، در صورتیکه آزمایش PCR در تعدادی از نمونه‌های مغزی دو گروه از موش های تلقیح شده پس از دو آزمایش زیستی سنجی مکرر مثبت بودند. نتایج این مطالعه نشان داد که درصد بالایی از جنین های سقط شده گاوی آلوده به نیوسپورا بودند . علاوه بر این ، این جدایه ها در موش BALB/C بیماری زایی پایینی داشتند، بنظر می رسد این جدایه ها متعلق به سویه های غیر حاد نیوسپورا باشند.
Keywords
نیوسپورا; سقط جنین; گاو; واکنش زنجیره ای پلیمراز; بررسی زیست‌سنجی
Supplementary Files
References
  1. Dubey J, Schares G, Ortega-Mora L. Epidemiology and control of neosporosis and Neospora caninum. Clinical microbiology reviews. 2007;20(2):323-67.
  2. Sadrebazzaz A, Habibi G, Haddadzadeh H, Ashrafi J. Evaluation of bovine abortion associated with Neospora caninum by different diagnostic techniques in Mashhad, Iran. Parasitology research. 2007;100(6):1257-60.
  3. Razmi GR, Zarea H, Naseri Z. A survey of Neospora caninum-associated bovine abortion in large dairy farms of Mashhad, Iran. Parasitology research. 2010;106(6):1419-23.
  4. Conraths J, Gottstein B. Neosporosis: general considerations. Protozoal abortion in farm ruminants, Wallingford: CAB international. 2007;425.
  5. Razmi GR, Zarae H, Nourbakhash M, Naseri Z. Estimating the rate of transplacental transmission of Neospora caninum to aborted fetuses in seropositive dams in Mashhad area, Iran. 2013.
  6. Nematollahi A, Moghaddam G, Jaafari R, Helan JA, Norouzi M. Study on outbreak of Neospora caninum-associated abortion in dairy cows in Tabriz (Northwest Iran) by serological, molecular and histopathologic methods. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine. 2013;6(12):942-6.
  7. Wouda W. Neosporosis: Biology, transmission and clinical signs. Protozoal Abortion in Farm Ruminants Wallingford, England CAB international. 2007:46-53.
  8. Hajikolaei MH, Hamidinejat H, Ghorbanpoor M, Goraninejad S. Serological study of Neospora caninum infection in cattle from Ahvaz area, Iran. 2008.
  9. HR H. Serological study of Neospora caninum in pregnant dairy cattle in Tehran, Iran. 2010.
  10. Ansari-Lari M. Bovine neosporosis in Iran: a systematic review and meta-analysis. Preventive Veterinary Medicine. 2020;176:104913.
  11. Gharekhani J, Yakhchali M, Berahmat R. Neospora caninum infection in Iran (2004–2020): A review. Journal of Parasitic Diseases. 2020;44(4):671-86.
  12. Rafati N, Jaafarian M. The determination of prevalence of Neospora caninum in aborted fetuses in dairy cattle of Shahrekord area, Chahar Mahal Bakhtiari province, by Nested-PCR. Journal of Veterinary Laboratory Research. 2014;6(1):45-50.
  13. Salehi N, Gottstein B, Haddadzadeh H. Genetic diversity of bovine Neospora caninum determined by microsatellite markers. Parasitology international. 2015;64(5):357-61.
  14. Razmi GR, Maleki M, Farzaneh N, Talebkhan Garoussi M, Fallah A. First report of Neospora caninum-associated bovine abortion in Mashhad area, Iran. Parasitology Research. 2007;100(4):755-7.
  15. Salehi N, Haddadzadeh H, Ashrafihelan J, Shayan P, Sadrebazzaz A. Molecular and pathological study of bovine aborted fetuses and placenta from Neospora caninum infected dairy cattle. Iranian Journal of Parasitology. 2009;4(3):40-51.
  16. Kaveh A, Merat E, Samani S, Danandeh R, Nezad SS. Infectious Causes of Bovine Abortion in Qazvin Province, Iran. Archives of Razi Institute. 2017;72(4).
  17. Salehi N, Haddadzadeh H, Shayan P, Koohi MK. Isolation of Neospora caninum from an aborted fetus of seropositive cattle in Iran. 2012.
  18. Hoseini A, Merat E, Samani S, Nezhad SS, Danandeh R. Comparison of Neospora caninum infected tissues in aborted fetal bovine by PCR. 2018.
  19. Khani M, Arabkhazaeli F, Hosseini SD, Shayan P. Molecular detection of Neospora caninum in aborted fetuses of cattle farms in Arak. 2019.
  20. Amouei A, Sharif M, Sarvi S, Nejad RB, Aghayan SA, Hashemi-Soteh MB, et al. Aetiology of livestock fetal mortality in Mazandaran province, Iran. PeerJ. 2019;6:e5920.
  21. Müller N, Zimmermann V, Hentrich B, Gottstein B. Diagnosis of Neospora caninum and Toxoplasma gondii infection by PCR and DNA hybridization immunoassay. Journal of Clinical Microbiology. 1996;34(11):2850-2.
  22. Salehi B, Amouei A, Dodangeh S, Daryani A, Sarvi S, Safari-Kharyeki MR, et al. Molecular identification of Neospora caninum infection in aborted fetuses of sheep, cattle, and goats in Mazandaran Province, Northern Iran. Iranian Journal of Parasitology. 2021;16(3):483.
  23. Ansari-Lari M. Neospora caninum in aborted bovine fetuses in Iran: a systematic review and meta-analysis. Annals of Parasitology. 2021;67(3):357-66.
  24. Al-Qassab SE, Reichel MP, Ellis JT. On the biological and genetic diversity in Neospora caninum. Diversity. 2010;2(3):411-38.
  25. Calarco L, Barratt J, Ellis J. Genome wide identification of mutational hotspots in the apicomplexan parasite Neospora caninum and the implications for virulence. Genome biology and evolution. 2018;10(9):2417-31.
  26. Barr B, Anderson M, Blanchard P, Daft B, Kinde H, Conrad P. Bovine fetal encephalitis and myocarditis associated with protozoal infections. Veterinary Pathology. 1990;27(5):354-61.
  27. Conrad P, Barr B, Sverlow K, Anderson M, Daft B, Kinde H, et al. In vitro isolation and characterization of a Neospora sp. from aborted bovine foetuses. Parasitology. 1993;106(3):239-49.
  28. Lindsay D, Lenz S, Cole R, Dubey J, Blagburn B. Mouse model for central nervous system Neospora caninum infections. The Journal of parasitology. 1995:313-5.
  29. Miller C, Quinn H, Windsor P, Ellis J. Characterisation of the first Australian isolate of Neospora caninum from cattle. Australian Veterinary Journal. 2002;80(10):620-5.
  30. Rojo-Montejo S, Collantes-Fernández E, Regidor-Cerrillo J, Álvarez-García G, Marugan-Hernández V, Pedraza-Díaz S, et al. Isolation and characterization of a bovine isolate of Neospora caninum with low virulence. Veterinary parasitology. 2009;159(1):7-16.
  31. Dittrich RL, Regidor-Cerrillo J, Ortega-Mora LM, de Oliveira Koch M, Busch APB, Gonçalves KA, et al. Isolation of Neospora caninum from kidney and brain of a bovine foetus and molecular characterization in Brazil. Experimental parasitology. 2018;185:10-6.
  32. Dubey J, Shen S, Kwok O, Thulliez P. Toxoplasmosis in rats (Rattus norvegicus): congenital transmission to first and second generation offspring and isolation of Toxoplasma gondii from seronegative rats. Parasitology. 1997;115(1):9-14.
  33. Jenkins M, Parker C, Hill D, Pinckney R, Dyer R, Dubey J. Neospora caninum detected in feral rodents. Veterinary Parasitology. 2007;143(2):161-5.
Statistics
Article View: 292
PDF Download: 340


counter
Journal management system. designed by sinaweb