(2024). نشانگرهای التهابی در گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی ناشی از عفونت E.coli و استافیلوکوکوس. , 79(6), 1319-1328. doi: 10.32592/ARI.2024.79.6.1319
. "نشانگرهای التهابی در گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی ناشی از عفونت E.coli و استافیلوکوکوس". , 79, 6, 2024, 1319-1328. doi: 10.32592/ARI.2024.79.6.1319
(2024). 'نشانگرهای التهابی در گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی ناشی از عفونت E.coli و استافیلوکوکوس', , 79(6), pp. 1319-1328. doi: 10.32592/ARI.2024.79.6.1319
نشانگرهای التهابی در گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی ناشی از عفونت E.coli و استافیلوکوکوس. , 2024; 79(6): 1319-1328. doi: 10.32592/ARI.2024.79.6.1319

نشانگرهای التهابی در گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی ناشی از عفونت E.coli و استافیلوکوکوس

Archives of Razi Institute
Article 24, Volume 79, Issue 6, January and February 0, Pages 1319-1328    PDF (358.27 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.32592/ARI.2024.79.6.1319
Abstract
بررسی غلظت سرمی آمیلوئید A (SAA)، IL-6 و IL-8 در سرم در طول دوره های ماستیت بالینی و تحت بالینی ارزش قابل توجهی دارد. این مطالعه با هدف بررسی ارزش تشخیصی SAA، IL-6 و IL-8 در تشخیص زودهنگام ورم پستان تحت بالینی در گاوهای آلوده به اشریشیا کلی (E.coli) و عفونت استافیلوکوکوس انجام شد. این مطالعه تحلیلی مقطعی که در سال 1392 در گروه دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد بهبهان انجام شد، نشانگرهای التهابی را در 79 راس گاو شیری مبتلا به ورم پستان بالینی و تحت بالینی مورد ارزیابی قرار داد. گاوها به سه گروه گاوهای سالم، گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی و گاوهای مبتلا به ورم پستان بالینی تقسیم شدند. سپس این گروه ها از نظر آمیلوئید A (SAA)، IL-6 و IL-8 سرم بررسی شدند. ارزش تشخیصی نشانگرهای التهابی با محاسبه مناطق زیر منحنی (AUCs) منحنی‌های ROC تعیین شد. به طور کلی، در بین بیماران با آزمایش کشت مثبت (57٪)، 19٪ به E. coli، 22.8٪ به استرپتوکوکوس اوبریس و 15.2٪ (12 مورد) به استافیلوکوکوس اورئوس آلوده بودند. همبستگی قوی بین میانگین SCC و مقادیر IL-6 (P<0.005)، IL-8 (P<0.005) و SAA (P<0.005) مشاهده شد. علاوه بر این، SAA همبستگی قوی با IL-8 نشان داد (P<0.005). مقدار IL-6 با هر دو IL-8 (P<0.005) و SAA (P<0.005) همبستگی متوسطی داشت. حساسیت و ویژگی SCC (0.98)، SAA (0.90)، IL-6 (0.95) و IL-8 (0.87) برای تشخیص ورم پستان در گاوها بالا بود. مطالعه حاضر نشان داد که ورم پستان در گاوهای شیری با افزایش سیتوکین های التهابی مانند آمیلوئید A، IL-6 و IL-8 همراه است. این مطالعه نشان می دهد که تغییرات در این نشانگرهای زیستی می تواند برای تشخیص بیماری مورد استفاده قرار گیرد.
Keywords
اشریشیا کلی; نشانگرهای التهابی; ماستیت; استافیلوکوک
Supplementary Files
References
  1. Maity S, Ambatipudi K. Quantitative proteomics of milk whey reveals breed and season specific variation in protein abundance in Holstein Friesian cow and Murrah buffalo. Research in veterinary science. 2019;125:244-52.
  2. Cvetnić L, Samardžija M, Habrun B, Kompes G, Benić M. Microbiological monitoring of mastitis pathogens in the control of udder health in dairy cows. Slovenian Veterinary Research. 2016;53(3):131-40.
  3. Petersson-Wolfe CS, Mullarky IK, Jones GM. Staphylococcus aureus mastitis: cause, detection, and control. 2010.
  4. Yang M, Shi J, Tian J, Tao J, Chai M, Wang J, et al. Exogenous melatonin reduces somatic cell count of milk in Holstein cows. Scientific reports. 2017;7(1):43280.
  5. Abdelmegid S, Murugaiyan J, Abo-Ismail M, Caswell JL, Kelton D, Kirby GM. Identification of host defense-related proteins using label-free quantitative proteomic analysis of milk whey from cows with Staphylococcus aureus subclinical mastitis. International journal of molecular sciences. 2017;19(1):78.
  6. Sadat A, Farag AM, Elhanafi D, Awad A, Elmahallawy EK, Alsowayeh N, et al. Immunological and Oxidative Biomarkers in Bovine Serum from Healthy, Clinical, and Sub-Clinical Mastitis Caused by Escherichia coli and Staphylococcus aureus Infection. Animals. 2023;13(5):892.
  7. Roncada P, Piras C, Soggiu A, Turk R, Urbani A, Bonizzi L. Farm animal milk proteomics. Journal of proteomics. 2012;75(14):4259-74.
  8. Mudaliar M, Tassi R, Thomas FC, McNeilly TN, Weidt SK, McLaughlin M, et al. Mastitomics, the integrated omics of bovine milk in an experimental model of Streptococcus uberis mastitis: 2. Label-free relative quantitative proteomics. Molecular Biosystems. 2016;12(9):2748-61.
  9. Shaheen M, Tantary H, Nabi S. A treatise on bovine mastitis: disease and disease economics, etiological basis, risk factors, impact on human health, therapeutic management, prevention and control strategy. J Adv Dairy Res. 2016;4(1):1-10.
  10. Ibrahim ESF, Khalil SA, Torky HA. Prevalence of Esbl Producing Enterobacteriacae Isolated from Bovine Mastitis Milk. Alexandria Journal for Veterinary Sciences. 2018;58(1).
  11. Algammal AM, Enany ME, El-Tarabili RM, Ghobashy MO, Helmy YA. Prevalence, antimicrobial resistance profiles, virulence and enterotoxins-determinant genes of MRSA isolated from subclinical bovine mastitis in Egypt. Pathogens. 2020;9(5):362.
  12. González MD, Arnold CF, Rodríguez MF, Checa R, Montoya A, Fuentes MP, et al. Effect of two treatments on changes in serum acute phase protein concentrations in dogs with clinical leishmaniosis. The Veterinary Journal. 2019;245:22-8.
  13. Kováč G, Tóthová C, Nagy O, Seidel H. Milk amyloid A and selected serum proteins in cows suffering from mastitis. Acta veterinaria brno. 2011;80(1):3-9.
  14. HR G. Evaluation of serum and milk amyloid A in some inflammatory diseases of cattle. 2008.
  15. Bochniarz M, Zdzisińska B, Wawron W, Szczubiał M, Dąbrowski R. Milk and serum IL-4, IL-6, IL-10, and amyloid A concentrations in cows with subclinical mastitis caused by coagulase-negative staphylococci. Journal of dairy science. 2017;100(12):9674-80.
  16. Kovačević-Filipović M, Ilić V, Vujčić Z, Dojnov B, Stevanov-Pavlović M, Mijačević Z, Božić T. Serum amyloid A isoforms in serum and milk from cows with Staphylococcus aureus subclinical mastitis. Veterinary immunology and immunopathology. 2012;145(1-2):120-8.
  17. Miglio A, Moscati L, Fruganti G, Pela M, Scoccia E, Valiani A, Maresca C. Use of milk amyloid A in the diagnosis of subclinical mastitis in dairy ewes. Journal of dairy research. 2013;80(4):496-502.
  18. Hagiwara K, Yamanaka H, Hisaeda K, Taharaguchi S, Kirisawa R, Iwai H. Concentrations of IL-6 in serum and whey from healthy and mastitic cows. Veterinary research communications. 2001;25:99-108.
  19. Johnzon C-F, Dahlberg J, Gustafson A-M, Waern I, Moazzami AA, Östensson K, Pejler G. The effect of lipopolysaccharide-induced experimental bovine mastitis on clinical parameters, inflammatory markers, and the metabolome: a kinetic approach. Frontiers in Immunology. 2018;9:1487.
  20. Fu Y, Zhou E, Liu Z, Li F, Liang D, Liu B, et al. Staphylococcus aureus and Escherichia coli elicit different innate immune responses from bovine mammary epithelial cells. Veterinary immunology and immunopathology. 2013;155(4):245-52.
  21. Safak T, Rısvanli A, Asci-Toraman Z. Th1/Th2 cytokine polarization in milk according to different pathogens causing subclinical mastitis in cows. Mljekarstvo: časopis za unaprjeđenje proizvodnje i prerade mlijeka. 2022;72(2):105-13.
  22. Karthikeyan A, Radhika G, Aravindhakshan T, Anilkumar K. Expression profiling of innate immune genes in milk somatic cells during subclinical mastitis in crossbred dairy cows. Animal Biotechnology. 2016;27(4):303-9.
  23. Verbeke J, Van Poucke M, Peelman L, De Vliegher S. Differential expression of CXCR1 and commonly used reference genes in bovine milk somatic cells following experimental intramammary challenge. BMC genetics. 2015;16:1-8.
  24. Nannuru KC, Sharma B, Varney ML, Singh RK. Role of chemokine receptor CXCR2 expression in mammary tumor growth, angiogenesis and metastasis. Journal of carcinogenesis. 2011;10.
Statistics
Article View: 357
PDF Download: 292


counter
Journal management system. designed by sinaweb