اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات282
تعداد نشریات سازمان80
تعداد شماره‌ها3,168
تعداد مقالات35,197
تعداد مشاهده مقاله50,932,196
تعداد دریافت فایل اصل مقاله90,937,591
Rahmanzad, Fatemeh, Amininajafi, fatemeh, Bahonar, Alireza, Parvandar Asadollahi, Kaveh. (1403). Assessment of Different Newcastle Disease Virus Antigens and Inactivators of Binary Ethylene Amine and Formalin for the Hemagglutination Inhibition Assay. سامانه مدیریت نشریات علمی, 79(2), 437-444. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.437
Fatemeh Rahmanzad; fatemeh Amininajafi; Alireza Bahonar; Kaveh Parvandar Asadollahi. "Assessment of Different Newcastle Disease Virus Antigens and Inactivators of Binary Ethylene Amine and Formalin for the Hemagglutination Inhibition Assay". سامانه مدیریت نشریات علمی, 79, 2, 1403, 437-444. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.437
Rahmanzad, Fatemeh, Amininajafi, fatemeh, Bahonar, Alireza, Parvandar Asadollahi, Kaveh. (1403). 'Assessment of Different Newcastle Disease Virus Antigens and Inactivators of Binary Ethylene Amine and Formalin for the Hemagglutination Inhibition Assay', سامانه مدیریت نشریات علمی, 79(2), pp. 437-444. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.437
Rahmanzad, Fatemeh, Amininajafi, fatemeh, Bahonar, Alireza, Parvandar Asadollahi, Kaveh. Assessment of Different Newcastle Disease Virus Antigens and Inactivators of Binary Ethylene Amine and Formalin for the Hemagglutination Inhibition Assay. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1403; 79(2): 437-444. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.437

Assessment of Different Newcastle Disease Virus Antigens and Inactivators of Binary Ethylene Amine and Formalin for the Hemagglutination Inhibition Assay

Archives of Razi Institute
مقاله 26، دوره 79، شماره 2، خرداد و تیر 2024، صفحه 437-444    اصل مقاله (529.48 K)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.32592/ARI.2024.79.2.437
نویسندگان
Fatemeh Rahmanzad1؛ fatemeh Amininajafi2؛ Alireza Bahonar3؛ Kaveh Parvandar Asadollahi* 1
1Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
2Department of Pathology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
3Department of Epidemiology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
چکیده
Background and Objectives: Newcastle disease is a severe viral threat to the global poultry industry due to its high prevalence and rapid transmission. Evaluating vaccination timing and effectiveness is crucial, often accomplished through the hemagglutination inhibition (HI) assay. This test relies on the virus's agglutination ability in certain animals, utilizing various inactivated antigens. Our study aimed to assess multiple Newcastle viral antigens ( LaSota, clone, thermo-resistant strain, B1, and V4 ) inactivated by binary ethylene amine (BEA) and formalin, seeking the best antigen and inactivator for the HI assay.
Materials and Methods: We prepared the different ND antigens include; LaSota, Clone, thermo resistant, B1, V4 and the mixture of the antigens then inactivated them using BEA and formalin. The hemagglutination (HA) assay determined mean titers, comparing BEA and formalin inactivation. These antigens were also subjected to the HI test using 112 serum samples from different commercial poultry flocks to assess their performance.
Results: BEA-inactivated antigens exhibited significantly higher mean titers in the HA assay than formalin-inactivated antigens. In the evaluation of different antigens in the HI test, the mean titer of antigen B1 followed by clone and LaSota displayed a higher mean titer than others.
Conclusion: In conclusion, this study recommends using Hitchner pathotype antigens, specifically the B1 vaccine, for Newcastle disease HI testing. BEA is the preferred inactivator, preserving antigen structure particularly the structure of hemagglutinin antigen while minimizing risks. These findings can enhance serological testing accuracy, contributing to more effective disease control and prevention in the poultry industry.
کلیدواژه‌ها
Newcastle viral antigens؛ Serological tests؛ Commercial poultry flocks؛ Hitchner pathotype؛ Inactivator
عنوان مقاله [English]
ارزیابی آنتی ژن های مختلف ویروس بیماری نیوکاسل و غیرفعال کننده های باینری اتیلن آمین و فرمالین جهت آزمایش ممانعت از هماگلوتیناسیون
چکیده [English]
زمینه و هدف: بیماری نیوکاسل به دلیل شیوع بالا وگسترش سریع، تهدیدی مهم برای صنعت طیور در بسیاری از کشور های جهان است. ارزیابی زمان و اثربخشی واکسیناسیون بسیار مهم است، که اغلب از طریق روش مهار هماگلوتیناسیون (HI) انجام می شود. این آزمایش بر مبنای ویژگی آگلوتیناسیون گلبول های قرمز برخی جانوران توسط آنتی ژن های غیرفعال شده مختلف می‌باشد. دراین مطالعه آنتی ژنهای ویروس نیوکاسل شامل: لاسوتا، کلون، سویه ی مقاوم به گرما، B1 و V4 که با غیرفعال کننده های باینری اتیلن آمین و فرمالین غیرفعال شده بودند، جهت انتخاب مناسب ترین آنتی ژن و غیرفعال کننده برای آزمایش ممانعت ازهماگلوتیناسیون ارزیابی گردیدند .
مواد و روش ها: آنتی ژن های مختلف نیوکاسل را تهیه کردیم که عبارتند از لاسوتا، کلون، سویه ی مقاوم به گرما، B1 و V4 و مخلوطی از۵ نوع آنتی ژن ذکر شده، سپس با استفاده از باینری اتیلن آمین و فرمالین آنها را غیرفعال و. توسط آزمایش ممانعت از هماگلوتیناسیون میانگین تیتر آنتی ژن های غیرفعال شده توسط باینری اتیل آمین و فرمالین مقایسه شدند. سپس این آنتی ژن ها جهت ارزیابی عملکردشان با استفاده از 112 نمونه سرم از گله های مختلف طیور تجاری تحت آزمایش HI قرار گرفتند.
یافته ها: میانگین تیتر آنتی ژن‌های غیرفعال شده توسط باینری اتیلن آمین در آزمایش HA به طور معناداری از آنتی ژن‌های غیرفعال شده توسط فرمالین بیشتر می باشد. در ارزیابی آنتی ژن‌های مختلف در آزمایش HI، آنتی ژن B1 و بدنبال آن کلون و لاسوتا میانگین تیتر بالاتری نسبت به سایرین نشان دادند
نتیجه گیری: در نتیجه، این مطالعه استفاده از آنتی ژن های پاتوتیپ هیچر، به ویژه واکسن B1 را برای آزمایش HI بیماری نیوکاسل توصیه می کند. باینری اتیلن آمین غیرفعال کننده بهتری است زیرا ساختار آنتی ژن بویژه آنتی ژن هماگلوتیناسیون را حفظ می کند و در عین حال خطرات احتمالی را به حداقل می رساند. این یافته‌ها می‌توانند دقت تست‌های سرولوژیکی را افزایش داده و به کنترل و پیشگیری مؤثرتر بیماری در صنعت طیور کمک کنند.
کلیدواژه‌ها [English]
کلمات کلیدی: آنتی ژن های ویروسی نیوکاسل, آزمایشات سرولوژیکی؛ گله های طیور تجاری؛ پاتوتایپ هیچنر؛ غیرفعال کننده
سایر فایل های مرتبط با مقاله
مراجع
  1. Alexander D. The epidemiology and control of avian influenza and Newcastle disease. Journal of comparative pathology. 1995;112(2):105-126.
  2. Miller PJ. Koch G. Diseases of Poultry, Wiley-Blackwell in partnership with the American Association of Avian Pathologists. 2013; pp:89-107.
  3. Jin J, Zhao J, Ren Y, Zhong Q, Zhang G. Contribution of HN protein length diversity to Newcastle disease virus virulence, replication, and biological activities. Scientific Reports. 2016;6:36890.
  4. World organization for animal health, Newcastle Disease (Infection with Newcastle Disease Virus) In Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Chapter 3.3.14. Newcastle. 2021:1-22.
  5. Alexander DJ, Senne DA.  Newcastle disease and other avian paramyxoviruses. A laboratory manual for the isolation, identification, and characterization of avian pathogens. American Association of Avian Pathologists, GA: Athens. 2016;chapter 46:255-265.
  6. King DJ. Evaluation of Different Methods of Inactivation of Newcastle Disease Virus and Avian Influenza Virus in Egg Fluids and Serum. Avian diseases. 1991;35:505-514.
  7. Heckert RA, Nagy E. Evaluation of the hemagglutination-inhibition assay using a baculovirus-expressedhemagglutinin–neuraminidase protein for detection of Newcastle disease virus antibodies. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 1999;11:99–102.
  8. Razmaraii N, Toroghi N, Babaei H, Khalili I, Sadigh ES, Froghy L. Immunogenicity of commercial, formaldehyde, and binary ethylenimine inactivated Newcastle disease virus vaccines in specific pathogen-free chickens. Archives of Razi Institute. 2012;67(1):21- 25.
  9. World organization for animal health, Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals.Chapter 2.3.14. Newcastle disease (infection with Newastle disease virus). 2017.
  10. Ghalyanchi Langeroudi A, Sadri N, Aghaeean L, Modiri Hamedan A, Hojabr Rajeoni A, Hosseini H. Investigating the Role of Laboratory and Antigen in Repeatability of Results in Newcastle Virus Hemagglutination Inhibition. Veterinary research and biological products. 2020;134:201-208.
  11. Kai YH, Chi SC. Efficacies of inactivated vaccines against betanodavirus in grouper larvae (Epinephelus coioides) by bath immunization. 2008;26:1450-1457.
 

  1. Blackburn NK, Besselaar TG. A study of the effect of chemical inactivants on the epitopes of Rift Valley fever virus glycoproteins using monoclonal antibodies. Journal of Virological Methods. 1991;33(3):367-374.
  2. Bahnemann HG. Inactivation of viral antigens for vaccine preparation with particular reference to the application of binary ethylenimine. 1990;8:299-303.
  3. Agung Ayu Mirah Adi A, I Mantik Astawa IN, Agung Arta Putra IG. The efficacy of binary ethylenimine-inactivated vaccines of Gianyar-1/AK/2014 virulent strain in protecting chickens against Tabanan-1/ARP/2017. Vet. World. 2019;12:758-764.
  4. Akhtar M, Ahmed R, Hayat CS, Hussain I, Ashfaque M. Comparative Immune Response of Formalin Inactivated and Binnary Ethyleneimine Inactivated Angara Disease Vaccines. Pakistan Journal of Biological Sciences. 2000;3(8):1313-1314.
  5. Mudasser H, Iftikhar H, Hamid I, Zhao YZ, Jiang-bing S, Ning C. Immunogenicity of formaldehyde and binary ethylenimine inactivated infectious bursal disease virus in broiler chicks. Journal of Zhejiang University Science B. 2006;7(8):660-664.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,665
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 764


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب