News

a.z
(2023). تنوع ژنتیکی عقرب های هوتنتوتا (Scorpionidae: Buthidae) در خوزستان، ایران. , 78(1), 15-24. doi: 10.22092/ari.2022.359194.2385
. "تنوع ژنتیکی عقرب های هوتنتوتا (Scorpionidae: Buthidae) در خوزستان، ایران". , 78, 1, 2023, 15-24. doi: 10.22092/ari.2022.359194.2385
(2023). 'تنوع ژنتیکی عقرب های هوتنتوتا (Scorpionidae: Buthidae) در خوزستان، ایران', , 78(1), pp. 15-24. doi: 10.22092/ari.2022.359194.2385
تنوع ژنتیکی عقرب های هوتنتوتا (Scorpionidae: Buthidae) در خوزستان، ایران. , 2023; 78(1): 15-24. doi: 10.22092/ari.2022.359194.2385

تنوع ژنتیکی عقرب های هوتنتوتا (Scorpionidae: Buthidae) در خوزستان، ایران

Archives of Razi Institute
Article 5, Volume 78, Issue 1, January and February 0, Pages 15-24    PDF (738.82 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2022.359194.2385
Abstract
جنس عقرب هوتنتوتا یکی از معدود عقرب های مهم پزشکی ایران است. تجزیه و تحلیل مورفولوژیک با استفاده از آزمون تی تست ANNOVA با سطح معنی داری با ارزش P کمتر از 0.05 تفاوت بین هوتنتوتا سلسئی و هوتنتوتا زاگروسنسیس را نشان داد. با این حال، این روش قادر به تشخیص تفاوت بین اعضای یک گونه نبود. قطعات ژنی 12srRNA (374 جفت باز) و سیتوکروم c اکسیداز زیرواحد1 (624 جفت باز) از عقرب های هوتنتوتا جمع آوری شده از خوزستان با روش PCR تکثیر گردیدند. بر اساس توالی 12srRNA، تمام نمونه های هوتنتوتا سلسئی HS4)، HS6 و HS7) به جز HS5 در خوشه B قرار گرفتند، در حالیکه دو نمونه هوتنتوتا زاگروسنسیس (HZ6 و HZ1) با مقدار بوت استرپ 99 درصد در خوشه A جا شدند. با استفاده از توالی‌های 12srRNA، بیشترین فاصله ژنتیکی بین نمونه‌های خوزستان مربوط به نمونه های HS5 و HS7 بود که این میزان 7/16 درصد محاسبه گردید. با این حال، میزان تفاوت اسید آمینه ای این دو نمونه با استفاده از توالی COXI 9.2٪ بود. فاصله ژنتیکی HS7 و HS5 با تنها توالی مرجع عقرب هوتنتوتا سلسئی به ترتیب 8/11 و 2/9 درصد بود. داده های ریخت شناسی جدایی دو گونه را نشان داد که این حالت با درخت فیلوژنی مولکولی مطابقت داشت. از سوی دیگر، فاصله ژنتیکی نمونه‌های HS7 و HS5 با سایر اعضای گروه و همچنین با توالی عقرب مرجع که با استفاده از ژن COXI انجام شده بود، احتمال وجود تفاوت درون گونه‌ای را تایید کرد که این تفاوت تنها با داده‌های مورفولوژیکی قابل اثبات نبود.
Keywords
عقرب; آنالیز فیلوژنتیک; میتوکوندری; سیتوکروم اکسیداز ساب یونیت 1; هوتنتوتا
Supplementary Files
References
  1. Fet V, Sissom WD, Lowe G, Braunwalder ME. Catalog of the scorpions of the world (1758-1998). New York: New York Entomological Society; 2000.
  2. Fet V, Lowe G. Family Buthidae. In: Fet V, Sissom W, Lowe G, Braunwalder M, editors. Catalog of the Scorpions of the World (1758-1998). New York: New York Entomological Society; 2000. p. 54-286.
  3. Gantenbein B, Largiader CR. The phylogeographic importance of the Strait of Gibraltar as a gene flow barrier in terrestrial arthropods: a case study with the scorpion Buthus occitanus as model organism. Mol Phylogenet Evol. 2003;28(1):119-30.
  4. Mirshamsi O, Sari A, Elahi E, Hosseinie S. Phylogenetic relationships of Mesobuthus eupeus (C.L. Koch, 1839) inferred from COI sequences (Scorpiones: Buthidae). J Nat Hist. 2010;44(47-48):2851-72.
  5. Fet V. Fauna and Zoogeography of Scorpions (Arachnida: Scorpions) in Turkmenistan. In: Fet V, Atamuradov KI, editors. Biogeography and Ecology of Turkmenistan. Dordrecht: Springer Netherlands; 1994. p. 525-34.
  6. Dehghani R, Haghi FM, Mogaddam MY, Sedaghat M, Hajati H. Review study of scorpion classification in Iran. J Entomol Zool Stud. 2016;4(5):440-4.
  7. Navidpour S. An annotated checklist of scorpions in south and southwestern parts of Iran. Int J Fauna Biol Stud. 2015;2(3):9-15.
  8. Fet V, Gantenbein B, Gromov AV, Lowe G, Lourenço WR. The first molecular phylogeny of Buthidae (Scorpiones). Euscorpius. 2003;2003(4):1-10.
  9. Kassiri H, Dehghani R, Kaviani M, Dehghani M, Kasiri M. First report of Hottentotta schach (Arachnida: Scorpionida: Buthidae) as a new record from Isfahan Province, Central Iran. J Entomol Res. 2020;44(1):153-6.
  10. Sousa P, Froufe E, Harris DJ, Alves PC, Meijden Avd. Genetic Diversity of Maghrebian Hottentotta (Scorpiones: Buthidae) Scorpions Based on CO1: New Insights on the Genus Phylogeny and Distribution. Afr Invertebr. 2011;52(1):135-43.
  11. Jafari H, Saalabi F, Jelodar A, Navidpour S, Jahanifard E, Forouzan A, et al. Phylogenetic study on Orthochirus iranus by using morphological and molecular methods (Scorpiones: Buthidae). J Entomol Zool Stud. 2018;6:304-9.
  12. Nikkhah N, Jolodar A, Taghavi Moghadam A. Phylogenetic analysis of cytochrome oxidase subunit 1 from the Mesobuthus eupeus (Scorpions: Buthidae) of Khuzestan province. Iran Vet J. 2018;14(3):102-11.
  13. Jolodar A. Molecular characterization and phylogeny analysis based on sequences of cytochrome oxidase gene from Hemiscorpius lepturus of Iran. Iran J Vet Med. 2019;13(1):59-67.
  14. Azghadi S, Mirshamsi O, Navidpour S, Aliabadian M. Scorpions of the genus Odontobuthus Vachon, 1950 (Scorpiones: Buthidae) from Iran: Phylogenetic relationships inferred from mitochondrial DNA sequence data. Zoology in the Middle East. 2014;60(2):169-79.
  15. Polis G, Stanford E. The Biology of Scorpion. Stanford, California: Stanford University Press; 1990.
  16. Vachon M. Etude des caraeteres utilises pour classer les families et les genres de Scorpions (Arachnides). 1. La trichobothriotaxie en arachnologie. Sigles trichobothriaux et types de trichobothriotaxie chez les Scorpions. Bull Mus Natl Hist Nat, Paris. 1974;140:857-958.
  1. White TJ, Bruns T, Lee S, Taylor J. 38 - amplification and direct sequencing of fungal ribosomal rna genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ, editors. PCR Protocols. San Diego: Academic Press; 1990. p. 315-22.
  2. Folmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol Mar Biol Biotechnol. 1994;3(5):294-9.
  3. Altschul SF, Gish W, Miller W, Myers EW, Lipman DJ. Basic local alignment search tool. J Mol Biol. 1990;215(3):403-10.
  4. Quijano-Ravell AF, de Armas LF, Francke OF, Ponce-Saavedra J. A new species of the genus Centruroides Marx (Scorpiones, Buthidae) from western Michoacan State, Mexico using molecular and morphological evidence. Zookeys. 2019;859:31-48.
  5. Melnick DJ, Hoelzer GA. What is mtDNA good for in the study of primate evolution? Evol Anthropol. 1993;2(1):2-10.
  6. Huang X, Miller W. A time-efficient, linear-space local similarity algorithm. Advances in Applied Mathematics. 1991;12(3):337-57.
Statistics
Article View: 2,945
PDF Download: 7,232


counter
Journal management system. designed by sinaweb