(2022). تولید و ارزیابی ذرات ایمونومگنت برای جداسازی سالمونلا تیفی موریوم از شیر. , 77(5), 1601-1609. doi: 10.22092/ari.2022.356722.1902
. "تولید و ارزیابی ذرات ایمونومگنت برای جداسازی سالمونلا تیفی موریوم از شیر". , 77, 5, 2022, 1601-1609. doi: 10.22092/ari.2022.356722.1902
(2022). 'تولید و ارزیابی ذرات ایمونومگنت برای جداسازی سالمونلا تیفی موریوم از شیر', , 77(5), pp. 1601-1609. doi: 10.22092/ari.2022.356722.1902
تولید و ارزیابی ذرات ایمونومگنت برای جداسازی سالمونلا تیفی موریوم از شیر. , 2022; 77(5): 1601-1609. doi: 10.22092/ari.2022.356722.1902

تولید و ارزیابی ذرات ایمونومگنت برای جداسازی سالمونلا تیفی موریوم از شیر

Archives of Razi Institute
Article 12, Volume 77, Issue 5, January and February 0, Pages 1601-1609    PDF (575.4 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2022.356722.1902
Abstract
سالمونلا عامل بیماری‌های مشترک در انسان و گونه های حیوانی است. باکتری از راه انتقال مدفوعی-دهانی و مصرف محصولات حیوانی آلوده خام گسترش می‌یابد. با وجود اقداماتی که برای پیشگیری سالمونلوز انجام می‌شود، این باکتری باعث زیان‌های اقتصادی می شود. این مطالعه با هدف تهیه ذرات ایمونومگنت برای جداسازی باکتری سالمونلا از نمونه های شیر با آلودگی تجربی انجام شده است.
آنتی بادی‌ها از سرم خرگوش هیپرایمن خالص‌سازی شدند و با استفاده از DTPA به عنوان واسطه به نانوذرات Fe متصل شدند. ذرات تولید شده با میکروسکوپ الکترونی مورد بررسی قرار گرفتند. حد تشخیص باکتری با استفاده از ذرات ایمونومگنت در همراهی با کشت شیر گاو حاوی آلودگی تجربی با سالمونلا ارزیابی شد. باکتری های جدا شده با استفاده از کشت باکتریایی و آزمایش‌های بیوشیمیایی شناسایی شدند.
با استفاده از ذرات ایمونومگنت، باکتری‌های سالمونلا در بافر فسفات سالین استریل جمع‌آوری و در محیط کشت آگارمغذی کشت داده شدند. ردیابی نمونه دارای حداقل 104×3 باکتری در هر میلی‌لیتر با روش معمول کشت باکتری، انجام شد. با این حال، تمام غلظت‌های باکتری با استفاده از ذرات ایمونومگنت از نمونه‌های شیر جدا شدند و بر روی محیط کشت تشخیص داده شدند.
با استفاده از روش کنونی ایمونومگنت-کشت، 3 واحد تشکیل دهنده کلونی از باکتری سالمونلا تیفی‌موریوم در هر میلی‌لیتر از شیر آلوده تجربی در محیط کشت شناسایی شدند. نتایج حاصل شده بکارگیری IMB-کشت یاکتری را به‌جای کشت معمول باکتری پیشنهاد می‌نماید.
Keywords
سالمونلا; شیر; جداسازی با ایمونومگنت
References
  1. Andino A, Hanning I. Salmonella enterica: survival, colonization, and virulence differences among serovars. Sci World J. 2015;2015:520179.
  2. Gillespie IA, O'Brien SJ, Adak GK, Ward LR, Smith HR. Foodborne general outbreaks of Salmonella Enteritidis phage type 4 infection, England and Wales, 1992-2002: where are the risks? Epidemiol Infect. 2005;133(5):795-801.
  3. Ehuwa O, Jaiswal AK, Jaiswal S. Salmonella, Food Safety and Food Handling Practices. Foods. 2021;10(5).
  4. Dewey-Mattia D, Manikonda K, Hall AJ, Wise ME, Crowe SJ. Surveillance for Foodborne Disease Outbreaks - United States, 2009-2015. MMWR Surveill Summ. 2018;67(10):1-11.
  5. Marth EH. Salmonellae and Salmonellosis Associated with Milk and Milk Products. A Review1. J Dairy Sci. 1969;52(3):283-315.
  6. Sharp JCM, Paterson GM, Forbes GI. Milk-borne salmonellosis in Scotland. J Infect. 1980;2(4):333-40.
  7. Small RG, Sharp JC. A milk-borne outbreak due to Salmonella dublin. J Hyg (Lond). 1979;82(1):95-100.
  8. Crum-Cianflone NF. Salmonellosis and the gastrointestinal tract: more than just peanut butter. Curr Gastroenterol Rep. 2008;10(4):424-31.
  1. Chiu CH, Wu TL, Su LH, Chu C, Chia JH, Kuo AJ, et al. The emergence in Taiwan of fluoroquinolone resistance in Salmonella enterica serotype choleraesuis. N Engl J Med. 2002;346(6):413-9.
  2. Crump JA, Luby SP, Mintz ED. The global burden of typhoid fever. Bull World Health Organ. 2004;82(5):346-53.
  3. Blaser MJ, Newman LS. A review of human salmonellosis: I. Infective dose. Rev Infect Dis. 1982;4(6):1096-106.
  4. Oscar T. Dose-response model for 13 strains of salmonella. Risk Anal. 2004;24(1):41-9.
  5. Anon. Microbiology–General Guidance on Methods for the Detection of Salmonella. 1993.
  6. Alocilja EC, Radke SM. Market analysis of biosensors for food safety. Biosens Bioelectron. 2003;18(5):841-6.
  7. Khosravi M, Nouri M, Mohammadi A, Mosavari N, Constable PD. Preparation of immunomagnetic beads coupled with a rhodamine hydrazine immunosensor for the detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in bovine feces, milk, and colostrum. J Dairy Sci. 2021;104(6):6944-60.
  8. Bell RL, Jarvis KG, Ottesen AR, McFarland MA, Brown EW. Recent and emerging innovations in Salmonella detection: a food and environmental perspective. Microb Biotechnol. 2016;9(3):279-92.
  9. Markey B, Leonard F, Archambault M, Cullinane A, Maguire D. Enterobacteriaceae. Clinical Vet Microbiol. 1. 2nd ed2013. p. 239-74.
  10. He Y, Ren Y, Guo B, Yang Y, Ji Y, Zhang D, et al. Development of a specific nanobody and its application in rapid and selective determination of Salmonella enteritidis in milk. Food Chem. 2020;310:125942.
  11. Dupont D, Luyten J, Bloemen M, Verbiest T, Binnemans K. Acid-Stable Magnetic Core–Shell Nanoparticles for the Separation of Rare Earths. Ind Eng Chem Res. 2014;53(39):15222-9.
  12. Chen J, Park B. Effect of immunomagnetic bead size on recovery of foodborne pathogenic bacteria. Int J Food Microbiol. 2018;267:1-8.
  13. Ahmed S, Rubahn H-G, nter, Erdmann H. Development of an Immunomagnetic Separation Method for Viable Salmonella Typhimurium Detected by Flow Cytometry. Online J Biol Sci. 2016;16(4).
  14. Kumar S, Balakrishna K, Batra HV. Enrichment-ELISA for Detection of Salmonella typhi From Food and Water Samples. Biomed Environ Sci. 2008;21(2):137-43.
  15. Mansfield LP, Forsythe SJ. The detection of Salmonella using a combined immunomagnetic separation and ELISA end-detection procedure. Lett Appl Microbiol. 2000;31(4):279-83.
  16. Taha EG, Mohamed A, Srivastava K, Reddy P. Rapid detection of Salmonella in chicken meat using immunomagnetic separation, CHROMagar, ELISA and real-time polymerase chain reaction (RT-PCR). Int J Poult Sci. 2010;9(831):e835.
  17. Bang J, Shukla S, Kim YH, Kim M. Development of indirect competitive ELISA for the detection of Salmonella typhimurium. Rom Biotechnol Lett. 2012;17:7194-204.
  18. Barlen B, Mazumdar SD, Lezrich O, Kämpfer P, Keusgen M. Detection of Salmonella by Surface Plasmon Resonance. Biosensors. 2007;7(8):1427-46.
  19. Wang W, Liu L, Song S, Tang L, Kuang H, Xu C. A highly sensitive ELISA and immunochromatographic strip for the detection of Salmonella typhimurium in milk samples. Sensors (Basel). 2015;15(3):5281-92.
  20. Ding T, Suo Y, Zhang Z, Liu D, Ye X, Chen S, et al. A Multiplex RT-PCR Assay for S. aureus, L. monocytogenes, and Salmonella spp. Detection in Raw Milk with Pre-enrichment. Front Microbiol. 2017;8:989.
  21. Rastegar H, Ashtiani HA, Andalibi M, Nehshabouri SH, Akbari M, Rassam H, et al., editors. Detection, isolation and assessment of Salmonella entiritidis in milk by conventional culture methods and real-time PCR in Iran. 2013.
  22. Lynch MJ, Leon-Velarde CG, McEwen S, Odumeru JA. Evaluation of an automated immunomagnetic separation method for the rapid detection of Salmonella species in poultry environmental samples. J Microbiol Methods. 2004;58(2):285-8.
  23. Yang X, Li H, Wu Q, Zhang J, Chen L. Comparison of Direct Culture, Immunomagnetic Separation/culture, and Multiplex PCR Methods for Detection of Salmonella in Food. Food Sci Technol Res. 2015;21(5):671-5.
  24. Wang J, Li Y, Chen J, Hua D, Li Y, Deng H, et al. Rapid detection of food-borne Salmonella contamination using IMBs-qPCR method based on pagC gene. Braz J Microbiol. 2018;49(2):320-8.
  1. Brandao D, Liebana S, Campoy S, Alegret S, Isabel Pividori M. Immunomagnetic separation of Salmonella with tailored magnetic micro and nanocarriers. A comparative study. Talanta. 2015;143:198-204.
  2. Srisa-Art M, Boehle KE, Geiss BJ, Henry CS. Highly Sensitive Detection of Salmonella typhimurium Using a Colorimetric Paper-Based Analytical Device Coupled with Immunomagnetic Separation. Anal Chem. 2018;90(1):1035-43.
  3. Bai Y, Cui Y, Suo Y, Shi C, Wang D, Shi X. A Rapid Method for Detection of Salmonella in Milk Based on Extraction of mRNA Using Magnetic Capture Probes and RT-qPCR. Front Microbiol. 2019;10:770.
  1. Wang M, Zhang Y, Tian F, Liu X, Du S, Ren G. Overview of Rapid Detection Methods for Salmonella in Foods: Progress and Challenges. Foods. 2021;10(10).
  2. Jalali H, Mozaffari Nejad AS, Ebadi AG, Laey G. Ethnobotany and Folk Pharmaceutical Properties of Major Trees or Shrubs in Northeast of Iran. Asian J Chem. 2009;21:5632-8.
Statistics
Article View: 1,627
PDF Download: 2,550


counter
Journal management system. designed by sinaweb