| تعداد نشریات | 282 |
| تعداد نشریات سازمان | 80 |
| تعداد شمارهها | 3,168 |
| تعداد مقالات | 35,197 |
| تعداد مشاهده مقاله | 50,949,090 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 90,953,818 |
اثر غلظتهای مختلف تنظیمکنندههای رشد گیاهی بر باززایی و ریشهزایی درون شیشهای Rubus occidentalis | ||
| تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران | ||
| مقاله 11، دوره 38، شماره 1 - شماره پیاپی 111، فروردین 1401، صفحه 166-175 اصل مقاله (542.85 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijmapr.2022.356438.3090 | ||
| نویسندگان | ||
| یوسف قاسمی1؛ فرشته حیدرقلی نژاد2؛ صدیقه کلیج3؛ مجتبی ایمانی راستابی* 4 | ||
| 1کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| 2دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
| 3استادیار، گروه زیستشناسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران | ||
| 4دانشآموخته دکتری، گروه علوم جنگل، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
| چکیده | ||
| تمشک سیاه حاوی موادی مانند الاژیک اسید، آنتوسیانین، کمپفرول و سالیسیلیک اسید است. بههمین دلیل دارای فعالیت آنتیاکسیدانی بالایی است که میتواند غیرفعالکننده رادیکال آزاد باشد و از بروز بسیاری از بیماریها ازجمله سرطان جلوگیری کند. بهینهسازی روشهای کشت بافت برای تولید انبوه و انتقال ژن در تمشک سیاه بسیار حائز اهمیت است. هدف از این تحقیق، تعیین اثر غلظتهای مختلف تنظیمکنندههای رشد گیاهی بر باززایی و ریشهزایی و همچنین غلظتهای مختلف ساکارز بر ریشهزایی درون شیشهای تمشک سیاه بیخار (Rubus occidentalis) است. در مرحله اول اثر متقابل BA با غلظتهای 0.2، 0.5، 1، 1.5 و 2 میلیگرم در لیتر و IBA در غلظتهای 0 و 0.1 میلیگرم در لیتر بر باززایی ریزنمونه جوانه جانبی بررسی شد. در مرحله ریشهزایی اثر IBA، NAA و غلظتهای مختلف ساکارز بررسی شد. غلظت تنظیمکنندههای رشد در چهار سطح 0.2، 0.5، 0.75 و 1 میلیگرم در لیتر و از ساکارز در سطوح 1، 1.5، 3 و 4.5 درصد استفاده شد. بهترین تیمار مربوط به غلظتهای 1 و 1.5 میلیگرم در لیتر BA همراه با غلظت 1/0 میلیگرم در لیتر IBA با 100% میزان باززایی، میانگین تعداد شاخه (4.6) و طول شاخه (1.30 سانتیمتر) بود. نتایج نشان داد که محیط کشت حاوی NAA (با غلظت 0.75 میلیگرم در لیتر) و ساکارز 3% و 4.5% با ریشهدهی (100%)، تعداد (7.5) و طول ریشه (2.88 سانتیمتر) برای ریشهدهی مناسب بود. | ||
| کلیدواژهها | ||
| اکسین؛ باززایی؛ Rubus occidentalis L؛ سیتوکنین؛ کشت بافت | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of different concentrations of plant growth regulators on in vitro regeneration and rooting of thornless black berry (Rubus occidentalis L.) | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Y. Ghasemi1؛ F. Heidargholinezhad2؛ S. Kelij3؛ M. Imani Rastabi4 | ||
| 1M.Sc. graduate, Horticulture Department of Sari Agriculture Science and Natural Resources University, Sari, Iran | ||
| 2Ph.D. student, Horticulture Department of Guilan University, Rasht, Iran | ||
| 3Assistant professor, Department of Biology, Mazandaran University, Babolsar, Iran | ||
| 4Ph.D. graduate, Department of Forestry, Sari Agriculture Science and Natural Resources University, Sari, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| The thornless Black berry (Rubus occidentalis) contains components such as elagic acid, anthocyanin, campherol and salicylic acid. So, it has high antioxidant activity that can inactivate the free radicals and prevent many diseases, such as cancer. Optimization of tissue culture methods for mass production and gene transfer is very important for blackberry. The present study was aimed at determining the effects of different plant growth regulators concentrations on regeneration and rooting and the effects of different concentrations of sucrose on rooting of thornless black berry (Rubus occidentalis L.) under in vitro conditions. Interaction of BA (0.2, 0.5, 1, 1.5, and 2 mg.L-1) and IBA (0 and 0.1 mg.L-1) was investigated on lateral bud explants regeneration. In the rooting stage, the effects of IBA and NAA each at four levels of 0.2, 0.5, 0.75, and 1 mg.L-1 as well as sucrose at four levels of 1, 1.5, 3, and 4.5% were studied. BA (1 and 1.5 mg.L-1) + IBA (0.1 mg.L-1) was the best regeneration treatment (regeneration: 100%, number of shoots: 4.6, and shoot length: 1.30 cm). The results indicated that the best rooting medium contained NAA (0.75 mg.L-1) and sucrose 3 and 4.5% (rooting: 100%, number of roots: 7.5, and root length: 2.88 cm). | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Auxin, regeneration, Rubus occidentalis, cytokinin, tissue culture | ||
| مراجع | ||
|
- Amin, M.N., Rahman, M.M. and Manik, M.S., 2003. In vitro clonal propagation of Paederia foetida L. A medicinal plant of Bangladesh. Plant Tissue Culture, 13(5): 117-123. - Clark, J.R. and Finn, C.E., 2011. Blackberry breeding and genetics Fruit, vegetable and cereal and biotechnology. Global Science Books, 5(3): 27-43. - Faisal, M., Siddigque, I. and Anis, M., 2006. In vitro rapid regeneration of plantlets from nodal explants of Mucuna pruriens- A valuable medicinal plant. Plant Biotechnology, 148(1): 1-6. - Fernandez, G.E. and Clark, J.R., 1991. In vitro propagation of thornless ‘Navaho’ blackberry. Hort Science, 26(8): 1219-1226. - Gajdosava, A., Ostrolucka, M.G., Libiakov, G. and Simala, D., 2006. Microclonal propagation of vaccinum sp. and Rubus sp. and detection of genetic variability in culture in vitro. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 14(1): 103-119. - George, E.F., 1996. Plant Propagation by Tissue Culture Part 2: In practice. Exegetics Ltd., Edington England, 574p. - Georgieva, M., Badjakov, I., Dincheva, I., yancheva, S. and Kondakova, V., 2016. In vitro propagation of wild Bulgarian small berry fruits. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 22(1): 46-51. - Gonzalezm, M.V., Lopez, M., Valdes A.E. and Ordas., R.J., 2000. Micropropagation of three fruit species using nodal segments from field-grow plants. Annals Applied Biology, 137(14): 73-78. - Grattapaglia, D. and Machado, M.A., 1998. Micropropagation in culture de tecidos transformacao genetica de plantas. Embrapa-CNPH Brasilia, 10(2): 183-198. - Hartman, H.T., Kester, D.E., Davies J.R. and Genever, R.L., 1997. Plant Propagation: Principles and Practices. Prentice Hall International INC, 770p. - Jafari Najaf-Abadi, A. and Hamidoghli, Y., 2009. Micropropagation of thronless trailing blackberry (Rubus sp.) by axiallary bud explants. Australian Journal of Crop Science, 3(4): 191-194. - Jiang, C.H., Liu, Z. and Zheng, Q., 2015. Direct regeneration of plants derived from in vitro cultured shoot tips and leaves of poplar (Populus euramericana). Journal of Life Sciences, 9(3): 366-372. - Kasim, N.E. and Rayya, A., 2009. Effect of different collection times and some treatments on rooting and chemical in terminal constituents of bitter almond hardwood cutting. Journal of Agriculture and Biological Sciences, 5(2): 116-122. - Kollarova, K., Liskova, D., Kakoniova, D. and Lux, A., 2004. Effect of auxins on Karwinskia humboldtiana root cultures. Plant cell, Tissue and Organ Culture, 79(2): 213-221. - Larkin, P.J. and Scowcroft, W.R., 1981. Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theoretical and Applied Genetics, 60(5): 197-214. - Meng, R., Tony, H.H, chad, E.F. and Yonghai, L., 2004. Improving in vitro plant regeneration from leaf and petiole explants of Mario blackberry. Horticulture science, 39(2): 316-320. - Nurulhidayah, W.A., 2012. Effect of medium strength and hormones concentration on regeneration of Pogostemon cablin using nodes explant. Asian Journal of Biotechnology, 4(1): 46-52. - Rahman, M.M., Amin, M.N. and Ahmed, R., 2004. In vitro rapid regeneration from cotyledon expant of native olive (Elaeocarpus robustus Roxb.). Asian Journal Plant Science, 3(1): 31-35. - Rajendrap, M., Ram, C., Godara, N.R. and Vijay, B., 2013. In vitro plant regeneration of Rose (Rose hybrida L.) through various explants. Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences, 14(3): 112-119. - Razdan, M.K., 1993. An Introduction to Plant Tissue Culture. Oxford and IBH publishing, New Delhi, Bambey, Calcutta, 398p. - Reed, B.M., 1996. Multiplication of Rubus germplasm in vitro: A screen of 256 accessions. Fruit Varities Journal, 44(10): 141-148. - Ruzic, D. and Lazic, T., 2006. Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed Blackberry and Black currant cultivars. Agriculture Conspectus Scientificus, 71(4): 149-153. - Weber, C.L., 2013. Propagation: 83-90. In: Funt, R.C. and Harvey, K.H. (Eds.). Raspberries. CABI, 300p. - Zhang, L., Jiarong. L., Hogan, S., Chung, H., Gregorg, E. and Zhou, W.K., 2010. Inhibitory effect of rasberries on starch digestive enzyme and their antioxidant properties and phenolic composition. Food Chemistry, 11(9): 592-599. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,635 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 2,055 |
||