اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات282
تعداد نشریات سازمان80
تعداد شماره‌ها3,219
تعداد مقالات35,690
تعداد مشاهده مقاله53,564,728
تعداد دریافت فایل اصل مقاله92,844,104
پردیس, علیرضا, عبدالمحمدی خیاو, لیدا. (1399). عیارسنجی آنتی توکسین اپسیلون کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D در سرم خرگوش به روش الایزای غیر مستقیم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 33(3), 17-30. doi: 10.22092/vj.2019.126358.1585
علیرضا پردیس; لیدا عبدالمحمدی خیاو. "عیارسنجی آنتی توکسین اپسیلون کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D در سرم خرگوش به روش الایزای غیر مستقیم". سامانه مدیریت نشریات علمی, 33, 3, 1399, 17-30. doi: 10.22092/vj.2019.126358.1585
پردیس, علیرضا, عبدالمحمدی خیاو, لیدا. (1399). 'عیارسنجی آنتی توکسین اپسیلون کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D در سرم خرگوش به روش الایزای غیر مستقیم', سامانه مدیریت نشریات علمی, 33(3), pp. 17-30. doi: 10.22092/vj.2019.126358.1585
پردیس, علیرضا, عبدالمحمدی خیاو, لیدا. عیارسنجی آنتی توکسین اپسیلون کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D در سرم خرگوش به روش الایزای غیر مستقیم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1399; 33(3): 17-30. doi: 10.22092/vj.2019.126358.1585

عیارسنجی آنتی توکسین اپسیلون کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D در سرم خرگوش به روش الایزای غیر مستقیم

تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک
مقاله 3، دوره 33، شماره 3، مهر 1399، صفحه 17-30    اصل مقاله (780.01 K)
نوع مقاله: مقاله کامل
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/vj.2019.126358.1585
نویسندگان
علیرضا پردیس* ؛ لیدا عبدالمحمدی خیاو
بخش تحقیق و تولید واکسن های باکتریایی بی هوازی، آزمایشگاه تحقیقاتی کلستریدیا، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان ترویج آموزش توسعه کشاورزی، تهران، ایران
چکیده
کلستریدیوم پرفرینجنز یک باکتری گرم مثبت که براساس چهار توکسین اصلی آلفا، بتا، اپسیلون و یوتا به پنج تیپ A تا E تقسیم می شود. توکسین اپسیلون از توکسین‌های قوی کلستریدیایی و توکسین اصلی تیپ‌های B و D و عامل بیماری گاز گانگرن درانسان و آنتروتوکسمی در دام است. ارزیابی ایمنی ناشی از واکسن که در پیش‌گیری از این بیماری از اهمیت خاصی برخودار بوده که در فارماکوپه روش
(SN (Serum neutralization test برای آن پیشنهاد گردیده است. هدف این پژوهش ارزیابی تست الایزا به عنوان روشی جایگزین برای اندازگیری آنتی‌توکسین اپسیلون می‌باشد. ابتدا تست اندازه‌گیری توانایی واکسن به روش معمول انجام یافته و سرم‌های اخذ شده با هر دو روش معمول و الایزای غیرمستقیم بررسی گردید. میزان cut off کنترل منفی در تست الایزا 42/۰ برآورد شد و نتایج آزمون کراس نشان داد که سیستم الایزا برای توکسین اپسیلون اختصاصی عمل می‌نماید نتایج این پژوهش ارتباط معنی‌داری بین این دو تست در موارد واکسینه شده با نمونه فرمانتور نشان داد. آنالیز رگرسیون خطی، همبستگی ۸۴/۰ با P≤0.01 را نشان داد. در نهایت پیشنهاد گردید از تست الایزا به عنوان جایگزینی برای ارزیابی سطح ایمنی حیوانات آزمایشگاهی استفاده نمود. اگرچه برای استفاده در حیوانات هدف نیاز به تحقیقات بیشتر در این زمینه ضروری می باشد.
کلیدواژه‌ها
الایزای غیر مستقیم- واکسن آنتروتوکسمی- کلستریدیوم پرفرینجنز تیپ D؛ آنتی توکسین اپسیلون؛ serum neutralization test
عنوان مقاله [English]
Evaluation of Epsilon Antitoxin of Clostridium Perfringens Type D in The Rabbit Serum By Indirect ELISA
نویسندگان [English]
A. R. Paradise؛ L. Abdolmohammadi Khiav
Department Anaerobic Bacterial Vaccine Production and Research, Clostridia Research Laboratory, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Tehran, Iran.
چکیده [English]
Clostridium perfringens is a gram-positive bacterium divided into five major A, E, and iota toxins based on the four main toxins. Epsilon toxin is a potent clostridial toxin and a major toxin of Clostridium Perfringens B and D types, and is the cause of gangrene gas in humans and enterotoxemia in human. For safety assessment of the vaccine, which is important for prevention of this disease, has been proposed SN (Serum neutralization test) method in the pharmacopoeia. The purpose of this study was to evaluate the ELISA as an alternative method for measuring of epsilon antitoxin. First, vaccine potency test was performed using conventional method and the sera obtained were measured using both conventional and ELISA methods. The negative control cut-off was calculated 0.42 and cross-examination was shown that epsilon toxin had no cross reaction with other toxins of Clostridium spp.
The results of this study showed that there is a significant agreement between two tests for serum samples of vaccinated rabbits by polyvalent vaccine. Linear regression analysis gave correlation coefficients of 0.697 for the indirect ELISA, with a significance level of P<0.01. Finally, ELISA test could be used as an alternative MNT test which used for detection antibody in laboratory animals. However, further research in this field is needed for target animals.
کلیدواژه‌ها [English]
Indirect ELISA, enterotoxaemia vaccine, Clostridium perfringens type D, epsilon antitoxin, serum neutralization test
مراجع

1- Ardehali, M. and H. Dowran. 1973. Preparation of standard clostridial antitoxins in sheep. Arch Razi Inst 25: 17-21.
2 - Babe, T., B. Jafari and S. Bahmanpour. 2012. Typing of toxigenic isolates of Clostridium perfringens by ELISA in ostrich. African Journal of Microbiology Research 6: 1766-1769.
3- Bentancor, A. B., P. Halperin, M. Flores and F. Iribarren. 2009. Antibody response to the epsilon toxin of Clostridium perfringens following vaccination of Lama glama crias. The Journal of Infection in Developing Countries 3: 624-627.
4- Bhown, A. S. and A. Habeeb. 1977. Structural studies on ε-prototoxin of Clostridium perfringens type D. Localization of the site of tryptic scission necessary for activation to ε-toxin. Biochemical and biophysical research communications 78: 889-896.
5- British Pharmacopoeia. 2017. Clostridium Perfringens. Vet: 229-231.
6- Ebert, E., V. Öppling, E. Werner and K. Cussler. 1999. Development and prevalidation of two different ELISA systems for the potency testing of Clostridium perfringens β-and ε-toxoid containing veterinary vaccines. FEMS Immunology & Medical Microbiology 24: 299-311.
7- El Idrissi, A. H. and G. E. Ward. 1992. Development of double sandwich ELISA for Clostridium perfringens beta and epsilon toxins. Veterinary microbiology 31: 89-99.
8- El Idrissi, A. H. and G. E. Ward. 1992. Evaluation of enzyme-linked immunosorbent assay for diagnosis of Clostridium perfringens enterotoxemias. Veterinary microbiology 31: 389-396.
9- Féraudet-Tarisse, C., C. Mazuet, S. Pauillac, M. Krüger, C. Lacroux, M. R. Popoff, B. G. Dorner, O. Andréoletti, M. Plaisance and H. Volland. 2017. Highly sensitive sandwich immunoassay and immunochromatographic test for the detection of Clostridial epsilon toxin in complex matrices. PloS one 12: e0181013.
10- Hasani Derakhshan, M., M. Amini, M. Ali molaei, A. Jabbari, M. Shamsaddini, M. Ezzatkhah and M. Mosavi. 1391. The use of ELISA (ELISA) in the detection of Clostridium perfringens toxinotypes. Journal of Veterinary Laboratory Research 4: 131.
11- Lowry, O., J. Rosebrough, A. Farr and R. Randall. 1951. Protein measurement with the Folin Phenol reagent. Journal of biological chemistry 193: 265-275.
12- Miyata, S., O. Matsushita, J. Minami, S. Katayama, S. Shimamoto and A. Okabe. 2001. Cleavage of a C-terminal peptide is essential for heptamerization of Clostridium perfringens ε-toxin in the synaptosomal membrane. Journal of Biological Chemistry 276: 13778-13783.
13- Møller, K., P. Ahrens and A. Meyling. 1995. Comparison of toxicity neutralization, ELISA, and PCR tests for typing of Clostridium Perfringens and for detection of the enterotoxin gene, abstr. B16. International Conference on the Molecular Genetics and Pathogenesis of the Clostridia. P. 23.
14- Naylor, R., P. Martin and R. SharPe. 1987. Detection of Clostridium perfringens epsilon toxin by ELISA. Research in veterinary science 42: 255-256.
15- Niilo, L., R. E. Moffatt and R. Avery. 1963. Bovine “Enterotoxemia”. II. Experimental reproduction of the disease. The Canadian Veterinary Journal 4: 288.
16- Rahman, P., L. Rahman, H. Razieh, P. Reza and G. Shamsedin. 2014. Detection and determination of various types of Clostridium perfringens in sheep and goat by culture and ELISA method in Khuzestan province. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences 5: 32-40.
17- Rickwood, D. and B. D. Hames. 1990. Gel electrophoresis of proteins: A practical approach. Irl Press.
18- Rosskopf-Streicher, U., P. Volkers and E. Werner. 2003. Control of Clostridium perfringens vaccines using an indirect competitive ELISA for the epsilon toxin component. Pharmeuropa bio 2: 91-96.
19- Shortt, S., R. Titball and C. Lindsay. 2000. An assessment of the in vitro toxicology of Clostridiurn perfringens type D ε-toxin in human and animal cells. Human & experimental toxicology 19: 108-116.
20- Smith, D. 1986. The Pathogenic Anaerobic Bacteria. Clostridium perfringens. Chapter 7. Charles Thomas Publisher. Spring field. USA.
21- Subramanyam, K., V. Rao, S. Vijayakrishna and R. MVS. 2000. Purification of epsilon toxin of Cl. Perfringens type D by deae-cellulose charomatography. Indian Veterinary Journal (India).
22 - Thomson, R. V. 16-18 november 1982. Quantitation of ovine
Cl. perfringens epsilon and tetanus antitoxin by Enzyme immunoassay. IVth symposium of the commission for the study of animal diseases caused by anaerobes. Paris.
23- Uzal, F. A., K. Nielsen and W. Kelly. 1997. Detection of Clostridium perfringens type D epsilon antitoxin in serum of goats by competitive and indirect ELISA. Veterinary microbiology 57: 223-231.
24- Veschi, J. L. A., O. A. Bruzzone, D. M. Losada-Eaton, I. S. Dutra and M. E. Fernandez-Miyakawa. 2008. Naturally acquired antibodies against Clostridium perfringens epsilon toxin in goats. Veterinary immunology and immunopathology 125: 198-202.
25- Zayerzadeh, E., A. R. Jabbari, M. K. Koohi, G. Sadeghi Hashjin, Z. Ghasempourabadi and A. Fardipour. 2015. Purification of epsilon toxin from vaccinal strain of Clostridium perfringens type D using ion exchange chromatography and gel filtration. Iranian Veterinary Journal 11: 92-103.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,284
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 729


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب