News

a.z
(2021). تعیین خصوصیات مقایسه ای تیره سلولی BHK-21 C5 و تعیین حساسیت سلولی نسبت به ویروس سرخجه در مقایسه با سلول روتین RK13. , 76(3), 461-469. doi: 10.22092/ari.2020.342274.1458
. "تعیین خصوصیات مقایسه ای تیره سلولی BHK-21 C5 و تعیین حساسیت سلولی نسبت به ویروس سرخجه در مقایسه با سلول روتین RK13". , 76, 3, 2021, 461-469. doi: 10.22092/ari.2020.342274.1458
(2021). 'تعیین خصوصیات مقایسه ای تیره سلولی BHK-21 C5 و تعیین حساسیت سلولی نسبت به ویروس سرخجه در مقایسه با سلول روتین RK13', , 76(3), pp. 461-469. doi: 10.22092/ari.2020.342274.1458
تعیین خصوصیات مقایسه ای تیره سلولی BHK-21 C5 و تعیین حساسیت سلولی نسبت به ویروس سرخجه در مقایسه با سلول روتین RK13. , 2021; 76(3): 461-469. doi: 10.22092/ari.2020.342274.1458

تعیین خصوصیات مقایسه ای تیره سلولی BHK-21 C5 و تعیین حساسیت سلولی نسبت به ویروس سرخجه در مقایسه با سلول روتین RK13

Archives of Razi Institute
Article 10, Volume 76, Issue 3, January 0, Pages 461-469    PDF (462.93 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2020.342274.1458
Abstract
با توجه به استفاده گسترده ازسوبستراهای سلولی ایمن در تولید و کنترل کیفیت واکسن‌های ویروسی و بر اساس قوانین و توصیه‌های سخت گیرانه‌ سازمان بهداشت جهانی برای انتخاب و استفاده از بسترهای سلولی در آزمایشگاه ها به ویژه در تولید و کنترل کیفیت فراورده های بیولوژیک ویروسی، انتخاب یک بستر سلولی مناسب جهت تولید و کنترل این فراورده ها از اهمیت قابل توجهی برخوردار است. از این رو، هدف از این مطالعه جایگزینی لاین سلولی BHK-21 C5 با لاین سلولی RK13 (به دلیل مشکلات موجود در استفاده از این سلول برای تشخیص اثرات سایتوپاتیک ویروس سرخجه) جهت بررسی اثرات سیتوپاتیک ویروس سرخجه است. بنابراین در این مطالعه سعی شد تا با تعیین خصوصیات لاین سلولی BHK-21 C5 شامل ویژگی‌های رشد سلولی و تست‌های استریلیتی از بی‌خطر بودن آن اطمینان حاصل کنیم. پس از آن به منظور مقایسه حساسیت لاین‌های سلولی BHK-21 C5 و RK13 نسبت به ویروس سرخجه، تیتراسیون ویروس سرخجه با تهیه رقت‌های سریالی ویروس از10-1 تا 10-5 به روش میکرو با استفاده از میکروپلیت 96 خانه با لاین‌های سلولی مورد مطالعه انجام شد. تجزیه و تحلیل داده‌ها با نرم افزار SPSS و با استفاده از آزمون Test Paired-sample T- براساس نتایج تست های انجام شده با پیش فرض p-value <0/05 و برابر با 0.01 انجام شد. علاوه بر این، نمودار box-plotتفاوت معنی‌داری بین این لاین‌های سلولی نشان داد، بطوری که بر اساس نتایج حاصل و آنالیزهای صورت گرفته مشخص شد که لاین سلولی BHK-21 C5 از حساسیت بیشتری نسبت به ویروس سرخجه برخوردار است و می توان از این سلول در تولید کنترل کیفیت واکسن و مطالعات تحقیقاتی و تشخیصی ویروس سرخجه استفاده نمود.
Keywords
تعیین خصوصیات; سلول BHK; 21 C5; تست تیتراسیون; سلول RK13; ویروس سرخجه
References
  1. Aubrit F, Perugi F, Léon A, Guéhenneux F, Champion-Arnaud P, Lahmar M, et al. Cell substrates for the production of viral vaccines. Vaccine. 2015;33(44):5905-12.
  2. Petricciani J. Cell substrates: Where do we stand after 50 years of discussion? Dev Biol. 2006;123:11.
  3. Montagnon B, Fanget B, Nicolas A. The large-scale cultivation of VERO cells in micro-carrier culture for virus vaccine production. Preliminary results for killed poliovirus vaccine. Dev Biol Stand. 1981;47:55-64.
  4. Zahoor MA, Khurshid M, Qureshi R, Naz A, Shahid M. Cell culture-based viral vaccines: current status and future prospects. Future Virol. 2016;11(7):549-62.
  5. Plotkin SA. Vaccines: past, present and future. Nat Med. 2005;11(4s):S5.
  6. Whitford W. Using Disposables in Cell-Culture–Based Vaccine Production. BioProcess Int. 2010;8(4).
  7. Merten O-W. Advances in cell culture: anchorage dependence. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 2015;370(1661):20140040.
  8. Hudu SA, Alshrari AS, Syahida A, Sekawi Z. Cell culture, technology: enhancing the culture of diagnosing human diseases. J Clin Diagn Res. 2016;10(3):DE01.
  9. Hernandez R, Brown DT. Growth and maintenance of baby hamster kidney (BHK) cells. Curr Protoc Microbiol. 2010;17(1):A. 4H. 1-A. 4H. 7.
  10. Lennette EH, Schmidt NJ, Lennette DA, Emmons RW, Lennette ET. Diagnostic Procedures for Viral, Rickettsial, and Chlamydial Infections: American Public Health Association; 1995.
  11. Cunningham AL, Fraser J. Persistent rubella virus infection of human synovial cells cultured in vitro. J Infect Dis. 1985;151(4):638-45.
  12. Wang D-Y, Yeh S-Y, Chou C-P, Cheng H-F, Hsieh J-T, Lin C-P. Evaluation and validation of potency testing method for live rubella virus vaccine. J Food Drug Anal. 2001;9(4):183-190.
  13. Kallel H, Jouini A, Majoul S, Rourou S. Evaluation of various serum and animal protein free media for the production of a veterinary rabies vaccine in BHK-21 cells. J Biotechnol. 2002;95(3):195-204.
  14. Freshney RI. Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications: John Wiley & Sons; 2011.
  15. Abercrombie M. Fibroblasts. J Clin Pathol Suppl (Royal College of Pathologists). 1978;12:1.
  16. DeliveReD G. Animal Cell Culture Guide. 2012.
  17. Coecke S, Balls M, Bowe G, Davis J, Gstraunthaler G, Hartung T, et al. Guidance on good cell culture practice: a report of the second ECVAM task force on good cell culture practice. Altern Lab Anim. 2005;33(3):261-87.
  18. Nema R, Khare S. An animal cell culture: Advance technology for modern research.Sci Res. 2012;3(2)219-226.
  19. Phelan M, Lawler G. Cell counting. Current protocols in cytometry. 2001:Appendix 3A.
  20. Strober W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr Protoc Immunol. 2015;111(1):3B.
  21. Nema R, Khare S. An animal cell culture: Advance technology for modern research. Adv Biosci Biotechnol. 2012;3(3):219.
  22. Kaplitt MG, Loewy AD. Viral vectors: gene therapy and neuroscience applications: Academic Press; 1995.
  23. Murphy FA, Halonen PE, Harrison AK. Electron microscopy of the development of rubella virus in BHK-21 cells. J Virol. 1968;2(10):1223.
  24. Charretier C, Saulnier A, Benair L, Armanet C, Bassard I, Daulon S, et al. Robust real-time cell analysis method for determining viral infectious titers during development of a viral vaccine production process. J Virol Methods. 2018;252:57-64.
  25. Zimmerman JJ, Hill HT, Beran GW, Meetz MC. Serologic diagnosis of encephalomyocarditis virus infection in swine by the microtiter serum neutralization test. J Vet Diagn Invest. 1990;2(4):347-50.
  26. Fogel A, Plotkin SA. Markers of rubella virus strains in RK13 cell culture. J Virol. 1969;3(2):157-63.
  27. Salas-Benito JS, Nova-Ocampo D. Viral interference and persistence in mosquito-borne flaviviruses. J Immunol Res. 2015;2015:873404.
  28. Petricciani J, Sheets R. An overview of animal cell substrates for biological products. Biologicals. 2008;36(6):359-62.
  29. Oyeleye O, Ola S, Omitogun O. Basics of animal cell culture: Foundation for modern science. Biotechnol Mol Biol Rev. 2016;11(2):6-16.
  30. Betakova T, Svetlikova D, Gocnik M. Overview of measles and mumps vaccine: origin, present, and future of vaccine production. Acta Virol. 2013;57(2):91-6.
  31. Hess RD, Weber F, Watson K, Schmitt S. Regulatory, biosafety and safety challenges for novel cells as substrates for human vaccines. Vaccine. 2012;30(17):2715-27.
  32. Schiff LJ. production, characterization, and testing of banked mammalian cell substrates used to produce biological products. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2005;41(3-4):65-70.
  1. Srček VG, Čajavec S, Sladić D, Kniewald Z. BHK 21 C13 cells for Aujeszky’s disease virus production using the multiple harvest process. Cytotechnology. 2004;45(3):101-6.
  2. Singh S, Rajaram S. Devlopment and Commercialization of Cell Based Viral Vaccines for Animal Health in National Immunization in India. Int J Vaccin. 2016;3(3):00066.
  3. Bushar G, Sagripanti J-L. Method for improving accuracy of virus titration: standardization of plaque assay for Junin virus. J Virol Methods. 1990;30(1):99-107.
Statistics
Article View: 2,147
PDF Download: 3,365


counter
Journal management system. designed by sinaweb