بررسی فعالیت آکاریسیدالی عصاره ی کلشی سوم آتومناله (زعفران مرغزار) علیه کنه ی جنس هیالوما در شرایط برون تنی | ||
| Archives of Razi Institute | ||
| Article 13, Volume 76, Issue 2, January 0, Pages 293-301 PDF (373.04 K) | ||
| Document Type: مقالات پژوهشی | ||
| DOI: 10.22092/ari.2020.128349.1411 | ||
| Abstract | ||
| جنس هیالوما مسئول انتقال بیماریهای تک یاختهای، باکتریایی، ریکتزیایی، ویروسی و ایجاد خسارت اقتصادی به صنعت پرورش دام میباشد. اخیراً تلاشهای زیادی جهت ارزیابی و استفاده از داروهای گیاهی برای کنترل کنه انجام شده است. هدف از این مطالعه ارزیابی فعالیت آکاریسیدالی عصارههای آبی و اتانولی برگ و ریشهی گیاه کلشیسوم آتومناله علیه گونهی هیالوما در شرایط برونتنی میباشد. فعالیت آکاریسیدال عصارهی آبی گیاه کلشیسوم (CLA) ، اتانولی برگ (CLE) ، آبی ریشه (CRA) و اتانولی ریشه (CRE) در غلظتهای 50 ، 100 و 150 میلیگرم بر میلیلیتر پس از طی زمانهای 25/0 ، 5/0 ، 75/0 و 1 ساعت مورد بررسی قرار گرفت و از آب مقطر و سایپرمترین به عنوان کنترل استفاده شد. این آزمایشها در سه تکرار انجام شد و آزمایشات به روش اسپری انجام شد. دادهها با استفاده از نرمافزار GraphPad Prism 5 تحلیل شدند. ترکیب شیمیایی عصارهی گیاه کلشیسوم با استفاده از کروماتوگرافی گازی-طیف سنجی جرمی (GC -MS) مورد بررسی قرار گرفت. مهمترین ماده تشکیل دهنده شیمیایی به عنوان اسید کربامودیتیوئیک (04/30٪) شناخته شد. نتایج نشان داد که عصارههای CLA ، CLE ، CRA و CRE اثر ضد کنهای دارند، اما CLE (اتانولیک برگ کلشیسوم) دارای اثرات آکاریسیدال قوی تری بود. عصاره اتانولی برگ کلشیسین (CLE) در غلظت 50 ، 100 و 150 میلی گرم در میلی لیتر پس از 1 ساعت زمان مواجهه، میزان مرگ و میر 100٪ را نشان داد. از بین عصارهها اثربخشی عصارهی آبی ریشه (CRA) علیه گونه Hyalomma خیلی کم بود. غلظت کشنده متوسط (LC50) در غلظت 100 میلیگرم در میلیلیتر مشاهده شد. نتایج نشان داد که برگهای کلشیسوم حاوی ترکیبات ضدکنهای قوی هستند که ممکن است ترکیبات جدید ضدکنهای را برای کنترل مؤثر گونه Hyalomma فراهم کند. با این حال، مطالعات بیشتری برای ارزیابی اثر کلشیسوم آتومناله در شرایط درونتنی مورد نیاز است. | ||
| Keywords | ||
| آکاریسید; کلشیسوم آتومناله; جنس هیالوما | ||
|
Supplementary Files
|
||
| References | ||
|
Abbas, R.Z., Zaman, M.A., Colwell, D.D., Gilleard, J., Iqbal, Z., 2014. Acaricide resistance in cattle ticks and approaches to its management: the state of play. Vet Parasitol 203, 6-20.
Adenubi, O.T., Fasina, F.O., McGaw, L.J., Eloff, J.N., Naidoo, V., 2016. Plant extracts to control ticks of veterinary and medical importance: A review. South African Journal of Botany 105, 178-193.
Al-Rajhy, D.H., Alahmed, A.M., Hussein, H.I., Kheir, S.M., 2003. Acaricidal effects of cardiac glycosides, azadirachtin and neem oil against the camel tick, Hyalomma dromedarii (Acari: Ixodidae). Pest Manag Sci 59, 1250-1254.
Athanasiadou, S., Githiori, J., Kyriazakis, I., 2007. Medicinal plants for helminth parasite control: facts and fiction. Animal 1, 1392-1400.
Babar, W., Qbal, Z., Nisar Khan, M., Muhammad, G., 2012. An Inventory of the Plants Used for Parasitic Ailments of Animals. Pak Vet J 32, 183-187.
Benelli, G., 2015. Plant-borne ovicides in the fight against mosquito vectors of medical and veterinary importance: a systematic review. Parasitol Res 114, 3201-3212.
Borges, L.M., Ferri, P.H., Silva, W.J., Silva, W.C., Silva, J.G., 2003. In vitro efficacy of extracts of Melia azedarach against the tick Boophilus microplus. Med Vet Entomol 17, 228-231.
Brvar, M., Ploj, T., Kozelj, G., Mozina, M., Noc, M., Bunc, M., 2004. Case report: fatal poisoning with Colchicum autumnale. Crit Care 8, R56-59.
Dagleish, M.P., Ali, Q., Powell, R.K., Butz, D., Woodford, M.H., 2007. Fatal Sarcoptes scabiei infection of blue sheep (Pseudois nayaur) in Pakistan. J Wildl Dis 43, 512-517.
de la Fuente, J., Maritz-Olivier, C., Naranjo, V., Ayoubi, P., Nijhof, A.M., Almazan, C., et al., 2008. Evidence of the role of tick subolesin in gene expression. BMC Genom 9, 372.
Du, Y.H., Jia, R.Y., Yin, Z.Q., Pu, Z.H., Chen, J., Yang, F., et al., 2008. Acaricidal activity of extracts of neem (Azadirachta indica) oil against the larvae of the rabbit mite Sarcoptes scabiei var. cuniculi in vitro. Vet Parasitol 157, 144-148.
Ghosh, S., Sharma, A.K., Kumar, S., Tiwari, S.S., Rastogi, S., Srivastava, S., et al., 2011. In vitro and in vivo efficacy of Acorus calamus extract against Rhipicephalus (Boophilus) microplus. Parasitol Res 108, 361-37.
Godara, R., Parveen, S., Katoch, R., Yadav, A., Verma, P.K., Katoch, M., et al., 2014. Acaricidal activity of extract of Artemisia absinthium against Rhipicephalus sanguineus of dogs. Parasitol Res 113, 747-754.
Kirkwood, A., 1963. Longevity of the mites Dermanyssus gallinae and Liponyssus sylviarum. Exp Parasitol 14, 358-366.
Kupper, J., Rentsch, K., Mittelholzer, A., Artho, R., Meyer, S., Kupferschmidt, H., et al., 2010. A fatal case of autumn crocus (Colchicum autumnale) poisoning in a heifer: confirmation by mass-spectrometric colchicine detection. J Vet Diagn Invest 22, 119-122.
Magadum, S., Mondal, D.B., Ghosh, S., 2009. Comparative efficacy of Annona squamosa and Azadirachta indica extracts against Boophilus microplus Izatnagar isolate. Parasitol Res 105, 1085-1091.
Masood, S., Abbas, R., Iqbal, Z., Mk, M., Sindhu, Z.u.D., Zia, M., et al., 2013. Role of Natural Antioxidants for the Control of Coccidiosis in Poultry. Pak Vet J 33, 401-407.
Mullins, M.E., Carrico, E.A., Horowitz, B.Z., 2000. Fatal cardiovascular collapse following acute colchicine ingestion. J Toxicol Clin Toxicol 38, 51-54.
Nong, X., Fang, C.L., Wang, J.H., Gu, X.B., Yang, D.Y., Liu, T.F., et al., 2012. Acaricidal activity of extract from Eupatorium adenophorum against the Psoroptes cuniculi and Sarcoptes scabiei in vitro. Vet Parasitol 187, 345-349.
Olivo, C.J., Heimerdinger, A., Ziech, M.F., Agnolin, C.A., Meinerz, G.R., Both, F., et al., 2009. Extrato aquoso de fumo em corda no controle do carrapato de bovinos. Cienc Rural 39, 1131-1135.
Pirali-Kheirabadi, K., Teixeira da Silva, J.A., 2010. Lavandula angustifolia essential oil as a novel and promising natural candidate for tick (Rhipicephalus (Boophilus) annulatus) control. Exp Parasitol 126, 184-186.
Politi, F.A., Figueira, G.M., Araújo, A.M., Sampieri, B.R., Mathias, M.I., Szabó, M.P., et al., 2012. Acaricidal activity of ethanolic extract from aerial parts of Tagetes patula L. (Asteraceae) against larvae and engorged adult females of Rhipicephalus sanguineus (Latreille, 1806). Parasit Vectors 5, 295-306.
Ravindran, R., Juliet, S., Sunil, A.R., Kumar, K.G., Nair, S.N., Amithamol, K.K., et al., 2011. Eclosion blocking effect of ethanolic extract of Leucas aspera (Lamiaceae) on Rhipicephalus (Boophilus) annulatus. Vet Parasitol 179, 287-290. Ribeiro, V.L.S., Avancini, C., Gonçalves, K., Toigo, E., von Poser, G., 2008. Acaricidal activity of Calea serrata (Asteraceae) on Boophilus microplus and Rhipicephalus sanguineus. Vet Parasitol 151, 351-354. Singh, N.K., Jyoti, Vemu, B., Nandi, A., Singh, H., Kumar, R., et al., 2014. Acaricidal activity of Cymbopogon winterianus, Vitex negundo and Withania somnifera against synthetic pyrethroid resistant Rhipicephalus (Boophilus) microplus. Parasitol Res 113, 341-350. | ||
|
Statistics Article View: 2,283 PDF Download: 3,122 |
||