پارااکسوناز، اسفنگوزین-1- فسفات، توتال سیالیک اسید و پروتئین شوک حرارتی-27 پلاسمایی در گوسفندان مبتلا به سیستی سرکوس تنیکولیس کبدی: شواهدی بر تغییرات آسیب شناسی | ||
| Archives of Razi Institute | ||
| Article 8, Volume 73, Issue 1, January 1397, Pages 61-67 PDF (219.91 K) | ||
| Document Type: مقالات کوتاه | ||
| DOI: 10.22092/ari.2018.114062 | ||
| Authors | ||
| کاوه عظیم زاده* 1; امیر امنیت طلب1; محمد اسلام پناه2 | ||
| 1باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران | ||
| 2بخش آسیب شناسی، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران | ||
| Abstract | ||
| مطالعه حاضر اسفنگوزین 1 فسفات (S1P)، پارااکسوناز (PON) ، توتال سیالیک اسید(TSA) و پروتئین شوک حرارتی 27 (HSP-27) پلاسمایی را بررسی می کند که آیا در گوسفندان مبتلا به سیستی سرکوزیس کبدی دچار تغییرات می شوند. بنا بر این 40 گوسفند سالم و 40 گوسفند مبتلا به سیستی سرکوزیس که بر اساس مشاهده فرم کیستی شدید در کبد و نبود انگل خونی همراه با نبود فرم سیستی در لاشه انتخاب شده و سپس همه پارامترها در نمونه های سرمی و پلاسمایی مورد سنجش و ارزیابی قرار گرفتند. نتایج کاهش معنی دار در سطح p≤0.01 در PON ، TSA و آلبومین و افزایش معنی دار در سطح p≤0.01 در S1P ، مالون دی آلدئید (MDA) ، توتال بیلی روبین و بیلی روبین غیر کونژوکه در گروه بیمار نسبت به گروه سالم مشاهده گردید. ضمناً عدم تغییرات معنی دار در پروتئین تام پلاسمایی (TPP) در گروه سیستی سرکوزیس نسبت به گروه سالم به وقوع پیوست. کاهش سطح آلبومین و TSA نشاندهنده آسیب کبدی در گروه مبتلا به سیستی سرکوزیس کبدی است. بعلاوه اینکه، کاهش PON شاید بدلیل کبد چرب و افزایش MDA باشد. ضمناً افزایش S1P میتواند به فعالیت پلاکت ها نسبت داده شود. از طرفی افزایش HSP-27 ممکن است ناشی از استرس حاکم بر بیماری باشد. | ||
| Keywords | ||
| پارااکسوناز; اسفنگوزین 1 فسفات; توتال سیالیک اسید و پروتئین شوک حرارتی 27; سیستی سرکوس تنیکولیس | ||
| Full Text | ||
|
Paraoxonase, Sphingosine-1-phosphate, Acide sialique total, Protéine de choc thermique-27, Cysticercus taeniaculisParaoxonase, Sphingosine-1-phosphate, Acide sialique total, Protéine de choc thermique-27, Cysticercus taeniaculis | ||
| References | ||
|
Bamorovat, M., Radfar, M.H., Derakhshanfar, A., Molazadeh, M., Zarandi, M.B., 2014. A comparative evaluation of hematological, biochemical and pathological changes among infected sheep with Cysticercus tenuicollis and non-infected control group. J Parasit Dis 38, 399-403. Bobe, G., Young, J.W., Beitz, D.C., Invited Review: Pathology, Etiology, Prevention, and Treatment of Fatty Liver in Dairy Cows. J Dairy Sci 87, 3105-3124. Chrostek, L., Cylwik, B., Panasiuk, A., Brodowska-Adamusiak, D., Gruszewska, E., 2011. Lipid-bound sialic acid (LSA) in liver diseases of different etiologies. Ann Hepatol 10, 150-154. Ergonul, S., Askar, T.K., 2009. Anaplasmosisli sığırlarda ısı şok protein (HSP), malondialdehit (MDA), nitrik oksit (no) ve interlökin (IL-6, IL-10) düzeylerinin araştırılması. Kafkas Univ Vet Fak 15, 575-579. Fawzy, A., Attia, H., Khalaf, F.A., Abd El Sameea, E., El Tahawy, M.A., Farag, M., et al., 2013. Heat Shock Protein-70 and -27 Expressions as Parameters of Early Diagnosis and Disease Progression in Hepatocellular Carcinoma. Life Sci J 10, 262-268. Ferns, G., Shams, S., Shafi, S., 2006. Heat shock protein 27: its potential role in vascular disease. Int J Exp Pathol 87, 253-274. Ferre, N., Camps, J., Prats, E., Vilella, E., Paul, A., Figuera, L., et al., 2002. Serum paraoxonase activity: a new additional test for the improved evaluation of chronic liver damage. Clin Chem 48, 261-268. Halliwell, B., 1988. Albumin—An important extracellular antioxidant? Biochemical Pharmacology 37, 569-571. Ikeda, H., Ohkawa, R., Watanabe, N., Nakamura, K., Kume, Y., Nakagawa, H., et al., 2010. Plasma concentration of bioactive lipid mediator sphingosine 1-phosphate is reduced in patients with chronic hepatitis C. Clin Chim Acta 411, 765-770. Li, C., Jiang, X., Yang, L., Liu, X., Yue, S., Li, L., 2009. Involvement of sphingosine 1-phosphate (SIP)/S1P3 signaling in cholestasis-induced liver fibrosis. Am J Pathol 175, 1464-1472. Loban, A., Kime, R., Powers, H., 1997. Iron-binding antioxidant potential of plasma albumin. Clin Sci (Lond) 93, 445-451. Mido, S., Fath, E.M., Farid, A.S., Nonaka, N., Oku, Y., Horii, Y., 2012. Trichinella spiralis: infection changes serum paraoxonase-1 levels, lipid profile, and oxidative status in rats. Exp Parasitol 131, 190-194. Mymrikov, E.V., Seit-Nebi, A.S., Gusev, N.B., 2011. Large potentials of small heat shock proteins. Physiol Rev 91, 1123-1159. Nofer, J.R., 2008. High-density lipoprotein, sphingosine 1-phosphate, and atherosclerosis. J Clin Lipidol 2, 4-11. Saleh, M.A., Al-Salahy, M.B., Sanousi, S.A., 2009. Oxidative stress in blood of camels (Camelus dromedaries) naturally infected with Trypanosoma evansi. Vet Parasitol 162, 192-199. Sarandol, E., Tas, S., Dirican, M., Serdar, Z., 2005. Oxidative stress and serum paraoxonase activity in experimental hypothyroidism: effect of vitamin E supplementation. Cell Biochem Funct 23, 1-8. Soulsby, E.J.L., 1982. Helminths, Arthropods and Protozoa of Domesticated Animals, Lea and Febiger. Takuwa, Y., Ikeda, H., Okamoto, Y., Takuwa, N., Yoshioka, K., 2013. Sphingosine-1-phosphate as a mediator involved in development of fibrotic diseases. Biochim Biophys Acta 1831, 185-192. Toghill, P.J., Green, S., 1983. Platelet dynamics in chronic liver disease using the 111Indium oxine label. Gut 24, 49-52. Turk, R., Juretic, D., Geres, D., Turk, N., Rekic, B., Simeon-Rudolf, V., et al., 2004. Serum paraoxonase activity and lipid parameters in the early postpartum period of dairy cows. Res Vet Sci 76, 57-61. | ||
|
Statistics Article View: 2,127 PDF Download: 2,964 |
||