شناسایی ملکولی واریتههای ژنتیکی جدید مرتبط با آناپلاسما اوویس در شترهای یک کوهانه ایران | ||
| Archives of Razi Institute | ||
| Article 2, Volume 73, Issue 1, January 1397, Pages 11-18 PDF (387.86 K) | ||
| Document Type: مقالات پژوهشی | ||
| DOI: 10.22092/ari.2018.114055 | ||
| Author | ||
| وحید نعمان* | ||
| گروه دامپزشکی بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اصفهان، ایران | ||
| Abstract | ||
| اطلاعات اندکی در خصوص وجود گونههای آناپلاسما در شترهای ایران در دسترس است. در این مطالعه یک صد شتر یک کوهانه به ظاهر سالم که برای کشتار به کشتارگاه فرستاده شده بودند برای شناسایی گونههای آناپلاسما بوسیله آزمایش میکروسکوپی و آزمایش واکنش زنجیرهای پلیمراز مورد بررسی قرار گرفتند. آزمایش میکروسکوپی اسمیرهای خون محیطی رنگ آمیزی شده با گیمسا نشان داد که دو نمونه خون از یک صد گسترش خونی دارای ساختارهای آناپلاسما مانند بودند. جهت تایید وجود و شناسایی گونههای مختلف آناپلاسما، آزمون واکنش زنجیرهای پلیمراز با استفاده از آغازگرهایی که یک قطعه 750 جفت باز از ژن 16S rRNA را تکثیر میکردند انجام و محصول آزمون تعیین توالی شد. توالی نوکلئوتیدی بدست آمده با استفاده از نرم افزار بلاست با توالیهای موجود در بانک ژنی مقایسه شد. تجزیه و تحلیل دو توالی بدست آمده از ژن 16S rRNA نشان داد که محصولات مورد نظر در جنس آناپلاسما و خانواده آناپلاسما تاسهآ قرار دارند. تجزیه و تحلیل فیلوژنتیک با استفاده از توالی ژن 16S rRNA نشان داد که توالیهای به دست آمده در این مطالعه در خوشه واحدی با آناپلاسما اوویس قرار دارند. نتایج حاکی از شباهت 100-6/99 درصدی توالیهای تکثیر شده با توالیهای منتشر شده ژن 16S rRNA آناپلاسما اوویس می باشد. مطالعه حاضر حضور واریتههای ژنتیکی جدید مرتبط با آناپلاسما اوویس را در شتر یک کوهانه در جهان گزارش کرده است. تحقیقات تکمیلی برای یافتن ناقلین و همچنین اهمیت دامپزشکی و پزشکی این واریته به ظاهر جدید در ایران نیاز می باشد. | ||
| Keywords | ||
| آناپلاسما اوویس; شتر یک کوهانه; تشخیص ملکولی; ژن 16S rRNA; ایران | ||
| References | ||
|
Bastos, A.D., Mohammed, O.B., Bennett, N.C., Petevinos, C., Alagaili, A.N., 2015. Molecular detection of novel Anaplasmataceae closely related to Anaplasma platys and Ehrlichia canis in the dromedary camel (Camelus dromedarius). Vet Microbiol 179, 310-314. Belkahia, H., Ben Said, M., Sayahi, L., Alberti, A., Messadi, L., 2015. Detection of novel strains genetically related to Anaplasma platys in Tunisian one-humped camels (Camelus dromedarius). J Infect Dev Ctries 9, 1117-1125. Ben Said, M., Belkahia, H., Sayahi, L., Aloui, M., Jemli, M.H., Hadj Mohamed, B., et al., 2014. [First serological study of the prevalence of Anaplasma phagocytophilum in dromedary (Camelus dromedarius) in Tunisia]. Bull Soc Pathol Exot 107, 1-6. Chochlakis, D., Ioannou, I., Tselentis, Y., Psaroulaki, A., 2010. Human anaplasmosis and Anaplasma ovis variant. Emerg Infect Dis 16, 1031-1032. Dumler, J.S., Barbet, A.F., Bekker, C.P., Dasch, G.A., Palmer, G.H., Ray, S.C., et al., 2001. Reorganization of genera in the families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and 'HGE agent' as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. Int J Syst Evol Microbiol 51, 2145-2165. Ghafar, M.W., Shobrak, M.Y., 2014. Molecular detection and characterization of Anaplasma phagocytophilum, the causative agent of human granulocytic anaplasmosis, in some animals suspected to be competent reservoirs in Taif district, Kingdom of Saudi Arabia. Life Sci J 11, 63-69. Kocan, K.M., De La Fuente, J., Blouin, E.F., Garcia-Garcia, J.C., 2005. Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae): recent advances in defining host–pathogen adaptations of a tick-borne rickettsia. Parasitology 129, S285-S300. Lew, A.E., Gale, K.R., Minchin, C.M., Shkap, V., Theo de Waal, D., 2003. Phylogenetic analysis of the erythrocytic Anaplasma species based on 16S rDNA and GroEL (HSP60) sequences of A. marginale, A. centrale, and A. ovis and the specific detection of A. centrale vaccine strain. Vet Microbiol 92, 145-160. Li, Y., Yang, J., Chen, Z., Qin, G., Li, Y., Li, Q., et al., 2015. Anaplasma infection of Bactrian camels (Camelus bactrianus) and ticks in Xinjiang, China. Parasit Vectors 8, 313. Noaman, V., 2013. Discrimination between Anaplasma marginale and Anaplasma ovis by PCR-RFLP. World Appl Sci J 21, 190-195. Noaman, V., Shayan, P., 2009. Molecular detection of Anaplasma phagocytophilum in carrier cattle of Iran-first documented report. Iran J Microbiol 1, 37-42. Noaman, V., Shayan, P., 2010a. Comparison of Microscopy and PCR-RFLP for detection of Anaplasma marginale in carrier cattle. Iran J Microbiol 2, 89-94. Noaman, V., Shayan, P., 2010b. Molecular detection of Anaplasma bovis in cattle from central part of Iran. Vet Res Forum 1, 117-122. Noaman, V., Shayan, P., 2010c. A new PCR-RFLP method for detection of Anaplasma marginale based on 16S rRNA. Vet Res Commun 34, 43-50. Noaman, V., Shayan, P., Amininia, N., 2009a. Molecular diagnostic of Anaplasma marginale in carrier cattle. 4 1. Noaman, V., Shayan, P., Shahmoradi, A.H., 2009b. Detection of Anaplasma ovis based on 16S rRNA gene by PCR-RFLP in sheep from central part of Iran. J Vet Med Lab 1, 27-37. Parola, P., Roux, V., Camicas, J.-L., Baradji, I., Brouqui, P., Raoult, D., 2000. Detection of ehrlichiae in African ticks by polymerase chain reaction. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene 94, 707-708. Renneker, S., Abdo, J., Salih, D.E., Karagenc, T., Bilgic, H., Torina, A., et al., 2013. Can Anaplasma ovis in small ruminants be neglected any longer? Transbound Emerg Dis 60 Suppl 2, 105-112. Schwartz, H.J., 1992. Productive performance and productivity of dromedaries (Camelus dromedarius). Anim Res Dev 35, 86-98. Sudan, V., Sharma, R.L., Borah, M.K., 2014. Subclinical anaplasmosis in camel (Camelus dromedarius) and its successful therapeutic management. J Parasit Dis 38, 163-165. Tamura, K., Peterson, D., Peterson, N., Stecher, G., Nei, M., Kumar, S., 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol 28, 2731-2739. Torina, A., Galindo, R.C., Vicente, J., Di Marco, V., Russo, M., Aronica, V., et al., 2010. Characterization of Anaplasma phagocytophilum and A. ovis infection in a naturally infected sheep flock with poor health condition. Trop Anim Health Prod 42, 1327-1331. Wernery, U., Kinne, J., Schuster, R.K., 2014. Camelid infectious disorders. In: Health, O.W.O.f.A. (Ed.). | ||
|
Statistics Article View: 1,985 PDF Download: 3,066 |
||